Челпанова І. В.

МОРФОЛОГІЧНІ ТА РЕНТГЕНОЛОГІЧНІ АСПЕКТИ ПОСТРАВМАТИЧНОГО РЕМОДЕЛЮВАННЯ КІСТКИ НИЖНЬОЇ ЩЕЛЕПИ ПІСЛЯ ТРАНСПЛАНТАЦІЇ ОКТАКАЛЬЦІЙФОСФАТУ

---

Показати/Завантажити PDF

Про автора:

Челпанова І. В.

Рубрика:

МОРФОЛОГІЯ

Тип статті:

Наукова стаття

Анотація:

Остеопластичні матеріали широко застосовуються для лікування кісткових дефектів, однак повна та якісна регенерація кісток щелепно-лицевої ділянки, її механізми та динаміка залишаються недостатньо вивченими. Актуальність даної роботи полягає у використанні морфологічних, рентгенологічних та лектиногістохімічних методів дослідження для поглибленого вивченні динаміки ремоделювання кісткової тканини після створення дефекту та його заповнення остеопластичним матеріалом. Мета дослідження – визначити динаміку морфологічних, рентгенологічних, та лектиногістохімічних характеристик кістково-керамічного регенерату після трансплантації октакальційфосфату в експериментальний дефект нижньої щелепи кролика. Об’єкт і методи дослідження. Дослідження було проведено на 45 статевозрілих кроликах-самцях віком 6-7 місяців, вагою 2,5-3 кг. Тварини були розділені на контрольну та експериментальну групу (по 20 тварин кожна). Ще 5 інтактних тварин було використано для вивчення нормальної структури кісткової тканини досліджуваної ділянки нижньої щелепи. До контрольної групи увійшли тварини з дефектом кісткової тканини, який загоювався під кров’яним згустком. Експериментальну групу складали кролики, у яких кістковий дефект заповнювали остеотропним матеріалом з октакальційфосфатом. Контроль посттравматичного стану кісткової тканини в ділянці дефекту здійснювали впродовж 84 діб. Серед методик були використані: моделювання кісткового дефекту, оцінка макроструктури щелеп, рентгенографічне дослідження, радіовізіографічне дослідження, вивчення мікропрепаратів шліфів кістки та лектиногістохімічні дослідження зрізів декальцинованої кістки. Результати. Морфологічне дослідження експериментального кісткового дефекту нижньої щелепи після імплантації остеопластичного матеріалу з октакальційфосфатом дозволило виявити численні макроскопічні ознаки остеорегенерації, що корелювали з динамікою змін у шліфах кістки, на рентгенограмах та радіовізіограмах та з лектиногістохімічними характеристиками кістково-керамічного регенерату після трансплантації матеріалу в експериментальний дефект нижньої щелепи кролика, з’ясовані особливостей мінеральної щільності кісткової тканини нижньої щелепи кролика та відновлення її якості при імплантації в його порожнину октакальційфосфату. Висновки. Встановлено, що в експериментальній групі тварин, у яких пластику дефекту проводили з використанням матеріалу з октакальційфосфатом виявили доволі високу його остеоіндуктивну здатність та ефективність у порівнянні з контролем при загоєнні кісткової травми під кров’яним згустком.

Теги:

Список цитованої літератури:

1. Xue N, Ding X, Huang R, Jiang R, Huang H, Pan X, et al. Bone tissue engineering in the treatment of bone defects. Pharmaceuticals. 2022;15:879. DOI: https://doi.org/10.3390/ph15070879.
2. Ferraz MP. Bone grafts in dental medicine: an overview of autografts, allografts and synthetic materials. Materials (Basel). 2023;16:4117. DOI: https://doi.org/10.3390/ma16114117.
3. Szwed-Georgiou A, Płociński P, Kupikowska-Stobba B, Urbaniak MM, Rusek-Wala P, Szustakiewicz K, et al. Bioactive materials for bone regeneration: biomolecules and delivery systems. ACS Biomater Sci Eng. 2023;9:5222-54. DOI: https://doi.org/10.1021/acsbiomaterials.3c00609.
4. Migliorini F, Cuozzo F, Torsiello E, Spiezia F, Oliva F, Maffulli N. Autologous bone grafting in trauma and orthopaedic surgery: an evidencebased narrative review. J Clin Med. 2021;10:4347. DOI: https://doi.org/10.3390/jcm10194347.
5. Gillman CE, Jayasuriya AC. FDA-approved bone grafts and bone graft substitute devices in bone regeneration. Mater Sci Eng C. 2021;130:112466. DOI: https://doi.org/10.1016/j.msec.2021.112466.
6. Huang X, Lou Y, Duan Y, Liu H, Tian J, Shen Y, et al. Biomaterial scaffolds in maxillofacial bone tissue engineering: A review of recent advances. Bioact Mater. 2024;33:129-56. DOI: https://doi.org/10.1016/j.bioactmat.2023.10.031.
7. Adhikara AG, Maharani AP, Puspitasari A, Nuswantoro NF, Juliadmi D, Maras MAJ, et al. Bovine hydroxyapatite for bone tissue engineering: Preparation, characterization, challenges, and future perspectives. Eur Polym J. 2024;214:113171. DOI: https://doi.org/10.1016/j.eurpolymj.2024.113171.
8. Hamada S, Mori Y, Shiwaku Y, Hamai R, Tsuchiya K, Baba K, et al. Octacalcium phosphate/gelatin composite (OCP/Gel) enhances bone repair in a critical-sized transcortical femoral defect rat model. Clin Orthop Relat Res. 2022;480:2043-55. DOI: https://doi.org/10.1097/CORR.0000000000002257.
9. Jeong C-H, Kim J, Kim HS, Lim S-Y, Han D, Huser AJ, et al. Acceleration of bone formation by octacalcium phosphate composite in a rat tibia critical-sized defect. J Orthop Transl. 2022;37:100-12. DOI: https://doi.org/10.1016/j.jot.2022.09.007.
10. Pyo SW, Paik JW, Lee DN, Seo YW, Park JY, Kim S, et al. Comparative analysis of bone regeneration according to particle type and barrier membrane for octacalcium phosphate grafted into rabbit calvarial defects. Bioengineering. 2024;11:215. DOI: https://doi.org/10.3390/bioengineering11030215.
11. Council of Europe. European Convention for the protection of vertebrate animals used for experimental and other scientific purposes. Strasburg: Council of Europe. 1986;123:52.
12. European Parliament. Directive 2010/63/EU of the European Parliament and of the Council of 22 September 2010 on the Protection of Animals Used for Scientific Purposes. Off J Eur Union. 2010;53(L276):33-79.

Публікація статті:

«Вісник проблем біології і медицини», 2024 Випуск 4, 175, 590-599 сторінки, код УДК 616.716.4-001-089.843-073.7-018

DOI:

10.29254/2077-4214-2024-4-175-590-599