БІОЛОГІЧНІ ЕФЕКТИ НИЗЬКОМОЛЕКУЛЯРНОЇ ФРАКЦІЇ КРІОЕКСТРАКТУ СПІНАЛЬНИХ ГАНГЛІЇВ НА РЕПРОДУКТИВНУ СИСТЕМУ САМИЦЬ ЩУРІВ

  2. 2023
  3. БІОЛОГІЧНІ ЕФЕКТИ НИЗЬКОМОЛЕКУЛЯРНОЇ ФРАКЦІЇ КРІОЕКСТРАКТУ СПІНАЛЬНИХ ГАНГЛІЇВ НА РЕПРОДУКТИВНУ СИСТЕМУ САМИЦЬ ЩУРІВ

Нестерук Г. В., Легач Є. І.

БІОЛОГІЧНІ ЕФЕКТИ НИЗЬКОМОЛЕКУЛЯРНОЇ ФРАКЦІЇ КРІОЕКСТРАКТУ СПІНАЛЬНИХ ГАНГЛІЇВ НА РЕПРОДУКТИВНУ СИСТЕМУ САМИЦЬ ЩУРІВ

Показати/Завантажити PDF

Про автора:

Нестерук Г. В., Легач Є. І.

Рубрика:

НАНОМЕДИЦИНА ТА НАТОТЕХНОЛОГІЇ

Тип статті:

Наукова стаття

Анотація:

Одним із сучасних підходів до корекції функції репродуктивної системи є застосуванні нейротрофічних факторів, джерелом яких може бути фракція кріоекстракту спінальних гангліїв. У роботі представлена оцінка впливу низькомолекулярної фракції кріоектстракту спінальних гангліїв (<30кДа) на фолікулярний склад яєчників та скоротливу активність матки щурів. Експерименти проведені на білих безпородних самицях щурів 6 і 14 місяців, що відповідає репродуктивному та пізньому репродуктивному віку для цього виду тварин. Кріоекстракт отримували зі спінальних гангліїв неонатальних поросят. Фракцію кріоекстракту з молекулярною масою до 30 кДа отримували методом ультрафільтрації з використанням поліефірсульфонової мембрани. Загальний кріоекстракт та його низькомолекулярну фракцію вводили щурам внутрішньочеревно впродовж 9 днів. Після закінчення експерименту проведено гістологічне дослідження фолікулів яєчників та вивчення скоротливої активності матки методом органної бані. Встановлено, що загальний кріоекстракт спінальних гангліїв та його низькомолекулярна фракція відрізняються за своїм біологічним впливом на репродуктивну систему самиць щурів різного віку. Фракція кріоекстракту спінальних гангліїв здійснює активуючу дію на фолікулярний профіль яєчників щурів репродуктивного віку, що виражається у зменшенні кількості фолікулів гормононезалежних стадій розвитку. У той же час введення фракції призводить до зниження сили ізометричного скорочення матки у щурів, що може бути пов’язано із фізіологічними перебудовами її іннервації

Теги:

кріоекстракт спінальних гангліїв, матка, нейротрофічні фактори, скоротлива активність, яєчник

Список цитованої літератури:

  1. Yanai R, Nishida T, Chikama T, Morishige N, Yamada N, Sonoda KH. Potential New Modes of Treatment of Neurotrophic Keratopathy. Cornea. 2015;34(11):S121-7. DOI: 10.1097/ICO.0000000000000587.
  2. Bezdjian A, Kraaijenga VJ, Ramekers D, Versnel H, Thomeer HG, Klis SF, et al. Towards Clinical Application of Neurotrophic Factors to the Auditory Nerve; Assessment of Safety and Efficacy by a Systematic Review of Neurotrophic Treatments in Humans. Int J Mol Sci. 2016 Nov 26;17(12):1981. DOI: 10.3390/ijms17121981.
  3. McFarthing K, Prakash N, Simuni T. Clinical trial highlights: 1. Gene therapy for Parkinson’s, 2. Phase 3 Study in focus – Intec Pharma’s accordion pill 3. Clinical trials resources. J Parkinsons Dis. 2019;9(2):251-264. DOI: 10.3233/JPD-199001.
  4. Meyer AH, Feldsien TM, Mezler M, Untucht C, Venugopalan R, Lefebvre DR. Novel Developments to Enable Treatment of CNS Diseases with Targeted Drug Delivery. Pharmaceutics. 2023 Mar 29;15(4):1100. DOI: 10.3390/pharmaceutics15041100.
  5. Liu Z, Wu H, Huang S. Role of NGF and its receptors in wound healing (Review). Exp Ther Med. 2021 Jun;21(6):599. DOI: 10.3892/ etm.2021. 10031.
  6. Zhang HT, Li LY, Zou XL, Song XB, Hu YL, Feng ZT, et al. Immunohistochemical distribution of NGF, BDNF, NT-3, and NT-4 in adult rhesus monkey brains. J Histochem Cytochem. 2007 Jan;55(1):1-19. DOI: 10.1369/jhc.6A6952.2006.
  7. Katoh-Semba R, Ichisaka S, Hata Y, Tsumoto T, Eguchi K, Miyazaki N, et al. NT-4 protein is localized in neuronal cells in the brain stem as well as the dorsal root ganglion of embryonic and adult rats. J Neurochem. 2003 Aug;86(3):660-8. DOI: 10.1046/j.1471-4159.2003.01874.x.
  8. Barker PA, Mantyh P, Arendt-Nielsen L, Viktrup L, Tive L. Nerve Growth Factor Signaling and Its Contribution to Pain. J Pain Res. 2020 May 26;13:1223-1241. DOI: 10.2147/JPR.S247472.
  9. Mowla SJ, Farhadi HF, Pareek S, Atwal JK, Morris SJ, Seidah NG, et al. Biosynthesis and post-translational processing of the precursor to brain-derived neurotrophic factor. J Biol Chem. 2001 Apr 20;276(16):12660-6. DOI: 10.1074/jbc.M008104200.
  10. Streiter S, Fisch B, Sabbah B, Ao A, Abir R. The importance of neuronal growth factors in the ovary. Mol Hum Reprod. 2016;22(1):3-17. DOI: 10.1093/molehr/gav057.
  11. Zhai Y, Yao G, Rao F, Wang Y, Song X, Sun F. Excessive nerve growth factor impairs bidirectional communication between the oocyte and cumulus cells resulting in reduced oocyte competence. Reprod Biol Endocrinol. 2018 Mar 27;16(1):28. DOI: 10.1186/s12958-018-0349-7.
  12. Obata K, Tsujino H, Yamanaka H, Yi D, Fukuoka T, Hashimoto N, et al. Expression of neurotrophic factors in the dorsal root ganglion in a rat model of lumbar disc herniation. Pain. 2002 Sep;99(1-2):121-32. DOI: 10.1016/s 0304-3959(02)00068-4.
  13. Feng R, Muraleedharan Saraswathy V, Mokalled MH, Cavalli V. Self-renewing macrophages in dorsal root ganglia contribute to promote nerve regeneration. Proc Natl Acad Sci U S A. 2023 Feb 14;120(7):e2215906120. DOI: 10.1073/pnas.2215906120.
  14. Ogawa R, Fujita K, Ito K. Mouse embryonic dorsal root ganglia contain pluripotent stem cells that show features similar to embryonic stem cells and induced pluripotent stem cells. Biol Open. 2017;6(5):602-18. DOI: 10.1242/bio.021758.
  15. Sengupta P. The Laboratory Rat: Relating Its Age With Human’s. Int J Prev Med. 2013 Jun;4(6):624-30. Available from: https://www.ncbi. nlm.nih.gov/ pmc/articles/PMC3733029/.
  16. Globa V, Bondarenko T, Bozhok G, Samburg Y, Legach E. Biologically Active Compositions Containing Neurotrophic Factors Change the Contractile Activity of Detrusor of Rats with Infravesical Obstruction. Problems of Cryobiology and Cryomedicine. 2020;30(2):188-198. DOI: https://doi.org/10.15407/cryo30.02.188.
  17. Dixon D, Alison R, Bach U, Colman K, Foley GL, Harleman JH, et al. Nonproliferative and proliferative lesions of the rat and mouse female reproductive system. J Toxicol Pathol. 2014;27(3-4):1S-107S. DOI: 10.1293/tox.27.1S.
  18. Rhee JW, Zhang L, Ducsay CA. Suppression of myometrial contractile responses to oxytocin after different durations of chronic hypoxia in the near-term pregnant rat. Am J Obstet Gynecol. 1997 Sep;177(3):639-44. DOI: 10.1016/s0002-9378(97)70158-3.
  19. Cruz G, Fernandois D, Paredes AH. Ovarian function and reproductive senescence in the rat: role of ovarian sympathetic innervation. Reproduction. 2017 Feb;153(2):R59-R68. DOI: 10.1530/REP-16-0117.
  20. Chaves RN, Alves AMCV, Lima LF, Matos HMT, Rodrigues APR, Figueiredo JR. Role of nerve growth factor (NGF) and its receptors in folliculogenesis. Zygote. 2013;21(2):187-197. DOI: 10.1017/S0967199412 000111.
  21. Fu X, Zheng Q, Zhang N, Ding M, Pan X, Wang W, et al. CUMS Promotes the Development of Premature Ovarian Insufficiency Mediated by Nerve Growth Factor and Its Receptor in Rats. Biomed Res Int. 2020 Jun 30;2020:1946853. DOI: 10.1155/2020/1946853.
  22. Dole G, Nilsson EE, Skinner MK. Glial-derived neurotrophic factor promotes ovarian primordial follicle development and cell-cell interactions during folliculogenesis. Reproduction. 2008 May;135(5):671-82. DOI: 10.1530/REP-07-0405.
  23. Nilsson E, Dole G, Skinner MK. Neurotrophin NT3 promotes ovarian primordial to primary follicle transition. Reproduction. 2009 Oct;138(4):697-707. DOI: 10.1530/REP-09-0179.
  24. Español P, Luna R, Soler C, Caruana P, Altés-Arranz A, Rodríguez F, et al. Neural plasticity of the uterus: New targets for endometrial cancer? Womens Health (Lond). 2022 Jan-Dec;18:17455057221095537. DOI: 10.1177/174 55057221095537.
  25. Brauer MM. Plasticity in uterine innervation: State of the art. Curr Protein Pept Sci. 2017;18(2):108‐19. DOI: 10.2174/13892037176661 60322145411.
  26. Brauer MM, Smith PG. Estrogen and female reproductive tract innervation: cellular and molecular mechanisms of autonomic neuroplasticity. Auton Neurosci. 2015 Jan;187:1-17. DOI: 10.1016/j.autneu.2014.11.009.
  27. Latini C, Frontini A, Morroni M, Marzioni D, Castellucci M, Smith PG. Remodeling of uterine innervation. Cell Tissue Res. 2008 Oct;334(1):1- 6. DOI: 10.1007/s00441-008-0657-x.
  28. Al-Shawi R, Hafner A, Olsen J, Chun S, Raza S, Thrasivoulou C, et al. Neurotoxic and neurotrophic roles of proNGF and the receptor sortilin in the adult and ageing nervous system. Eur J Neurosci. 2008 Apr;27(8):2103-14. DOI: 10.1111/j.1460-9568.2008.06152.x.

Публікація статті:

«Вісник проблем біології і медицини», 2023 Випуск 2, 169, 402-409 сторінки, код УДК 615.361:612.622/.621.5

DOI:

10.29254/2077-4214-2023-2-169-402-409

2023 Випуск 2, 169
кріоекстракт спінальних гангліїв матка нейротрофічні фактори скоротлива активність яєчник
29.06.2023
Чи була ця стаття корисною?
0
0