Демидчук А. С., Шамало С. М., Котик Т. Л., Раскалєй Т. Я., Раскалєй В. Б., Попадинець О. Г., Токарук Н. С.

ОСОБЛИВОСТІ МОРФОЛОГІЧНИХ ЗМІН ПЕРИФЕРИЧНИХ НЕРВІВ В УМОВАХ ТРАВМИ, ІНТОКСИКАЦІЇ РТУТТЮ, ГІПОТИРЕОЗІ ТА ЇХ КОРЕКЦІЇ

---

Показати/Завантажити PDF

Про автора:

Демидчук А. С., Шамало С. М., Котик Т. Л., Раскалєй Т. Я., Раскалєй В. Б., Попадинець О. Г., Токарук Н. С.

Рубрика:

МОРФОЛОГІЯ

Тип статті:

Наукова стаття

Анотація:

Вступ. Травматичні ушкодження периферичного нерва (ТУПН) займають вагоме місце серед травм як в умовах воєнного часу, так і в побуті, призводять до значних ускладнень і знижують якість життя пацієнтів. Лікування ТУПН зазвичай комплексне та потребує мультидисциплінарного підходу, супроводжується тривалими функціональними обмеженнями та необхідністю реабілітації. Токсиканти навколишнього середовища, такі як ртуть, можуть здійснювати вплив на процеси регенерації периферичних нервів, що зумовлює важливість урахування впливу таких факторів на нервову тканину. Ендокринна патологія, зокрема гіпотиреоз, також має значний вплив на нервову тканину, впливає на когнітивні функції, нейропровідність та є додатковим аргументом для врахування його впливу при лікуванні ТУПН. Розуміння зв’язку між ТУПН, токсикантами та ендокринними розладами може сприяти розробці ефективних стратегій лікування та покращенню результатів відновної терапії периферичних нервів. Метою даного дослідження є встановлення морфологічних особливостей регенераторних процесів у периферичних нервах після травми на тлі експериментальної інтоксикації ртуттю та гіпотиреозу, а також за умови їх корекції. Встановлення цих особливостей дозволить ідентифікувати потенційний вплив токсикантів і ендокринної патології на регенеративну здатність периферичних нервів та розробити підґрунтя стратегій лікування таких ушкоджень. Об’єкт і методи дослідження. Дослідження виконано на 90 білих щурах, які були розподілені на три групи, кожна з яких складалася з підгруп «а» і «б». Травматичне ушкодження сідничого нерва моделювали шляхом його перерізання з відтермінованим ушиванням усім щурам. Підгрупам ІІа та ІІІа додатково моделювали експериментальну інтоксикацію ртуттю та гіпотиреоз, відповідно. Підгрупи Іб, ІІб та ІІІб додатково отримували лікування церебролізином, тіотриазоліном та L-тироксином+міакальциком, відповідно. Морфологічне дослідження включало світлооптичний та ультраструктурний аналіз. Результати. Травматичне ураження супроводжується структурною перебудовою проксимального, дистального відрізків та зони травми нерва. Є виражене розшарування та набряк ламел, дистрофічні зміни у аксональних циліндрах, нейролемі та в сполучнотканинному каркасі нерва. Застосування церебролізину має позитивний вплив на стромальні елементи нерва та мієлінізацію. Меркуріалізм зумовлює нерівномірність імпрегнації при морфологічному дослідженні, виражену хвилястість контурів. При корекції тіотриазоліном помітні позитивні зміни в структурі нейролемоцитів, що, у свою чергу, покращує процеси мієлінізації. Гіпотиреоз супроводжується загальмуванням дегенеративних змін, що сповільнює регенераторні процеси в травмованому нерві. Корекція синтетичними формами тиреоїдних гормонів активує нейролемоцити, у результаті чого чіткіше контурує мієлінова оболонка, нейролема та візуалізуються органели аксоплазми. Висновки. Встановлено загальні закономірності де – та регенерації ураженого периферичного нерва за умови застосування ноотропів, експериментальної інтоксикації ртуттю, гіпотиреозу та їх корекції. Дегенеративні процеси були значно сповільнені в умовах наявності додаткових пошкоджуючих факторів, ймовірно, через інгібування шванноцитів. У свою чергу, це призводить до відтермінування ініціалізації регенераторних процесів. Однак, корекція патологічних станів (ноотропами, антиоксидантами та цитопротекторами, синтетичними формами тиреоїдних гормонів), які супроводжували регенерацію пошкодженого нерва, безумовно пришвидшували її настання.

Теги:

Список цитованої літератури:

1. Dunn JC, Eckhoff MD, Nicholson TC, Campbell W, Kenney K, Smith J, et al. Combat-Sustained Peripheral Nerve Injuries in the United States Military. The Journal of Hand Surgery. 2021 Feb;46(2):148.e1-148.e8. DOI: https://doi.org/10.1016/j.jhsa.2020.08.004.
2. Althagafi A, Nadi M. Acute Nerve Injury. Treasure Island (FL): StatPearls Publishing; 2022.
3.  Li NY, Onor GI, Lemme NJ, Gil JA. Epidemiology of Peripheral Nerve Injuries in Sports, Exercise, and Recreation in the United States, 2009 – 2018. The Physician and Sportsmedicine. 2020 Nov 23;49(3):355–62. DOI: https://doi.org/10.1080/00913847.2020.1850151.
4. Bergmeister KD, Große-Hartlage L, Daeschler SC, Rhodius P, Böcker A, Beyersdorff M, et al. Acute and long-term costs of 268 peripheral nerve injuries in the upper extremity. PLOS ONE. 2020 Apr 6;15(4):e0229530. DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0229530.
5. Park C, Cho W, Son B. Iatrogenic Injury to the Sciatic Nerve due to Intramuscular Injection: A Case Report. Korean Journal of Neurotrauma. 2019;15(1):61. DOI: https://doi.org/10.13004/kjnt.2019.15.e4.
6. Huckhagel T, Nüchtern J, Regelsberger J, Gelderblom M, Lefering R. Nerve trauma of the lower extremity: evaluation of 60,422 leg injured patients from the TraumaRegister DGU® between 2002 and 2015. Scandinavian Journal of Trauma, Resuscitation and Emergency Medicine. 2018 May 15;26(1):40. DOI: https://doi.org/10.1186/s13049-018-0502-5.
7. Ekayoda O, Kadiri HE, Ohwokevwo OA. Combined Effects of Cadmium – and Cyanide-Contaminated Diet on Oxidative Stress Biomarkers in Different Tissues of Rats. Galician Medical Journal. 2022 Oct 18;29(4):E202244. DOI: https://doi.org/10.21802/gmj.2022.4.4.
8. Vennam S, Georgoulas S, Khawaja A, Chua S, Strouthidis NG, Foster PJ. Heavy metal toxicity and the aetiology of glaucoma. Eye. 2019 Nov 19;34(1):129-37. DOI: https://doi.org/10.1038/s41433-019-0672-z.
9. Cariccio VL, Samà A, Bramanti P, Mazzon E. Mercury Involvement in Neuronal Damage and in Neurodegenerative Diseases. Biological Trace Element Research. 2018 May 18;187(2):341-56. DOI: https://doi.org/10. 1007/s12011-018-1380-4.
10. Ranhulova T. Non-Alcoholic Fatty Liver Disease and Hypothyroidism: Review of Clinical and Experimental Studies. Galician Medical Journal. 2021;28(4):E202142. DOI: https://doi.org/10.21802/gmj.2021.4.2.
11. Rakugi H. Cognitive Dysfunction in Hypothyroidism. Science Insights. 2023 Feb 28;42(2):813-8. DOI: https://doi.org/10.15354/si.23.re126.
12. Bose I, Bal C, Biswas C. A comparative study of changes in nerve conduction velocity among subclinical hypothyroid patients and normal individuals. IOSR Journal of Dental and Medical Sciences (IOSR-JDMS). 2020;19(1):01-07.
13. Bafna G, Sharma S, Darger G. Study of Sensory Nerve Conduction Abnormalities in Hypothyroid Patients. International Journal Of Medical, Pharmacy And Drug Research. 2020;4(1):4-8. DOI: https://doi.org/10.22161 /ijmpd.4.1.2.
14. Stechenko LO, Petrenko VA, Byk PL, Kuzian VR, Kuftyreva TV, vynakhidnyky; Natsionalʹnyy medychnyy universytet imeni 0.0. Bohomolʹtsya, patentovlasnyk. Sposib modelyuvannya hipotyreozu u shchuriv. Patent Ukrainy № 27821. 2007 Lyst 12. [in Ukrainian].
15. Demidchuk AS. Morphological changes of rats after peripheral nerve injury and pharmacological correction in the early stages of research. World of Medicine and Biology. 2015;4.1(53):111-114.
16. Sherifa AH. Cerebrolysin as a nerve growth factor for treatment of acquired peripheral nervous system diseases. Neural Regeneration Research. 2011;6(18):1415-1420.
17. Jia F, Dong H, Jiang X, Niu C, Du L, Feng J. Cerebrolysin improves sciatic nerve dysfunction in a mouse model of diabetic peripheral neuropathy. Neural Regeneration Research. 2016;11(1):156. DOI: https://doi.org/10.4103/1673-5374.175063.
18. Chang F, Wang Y, Liu P, Peng J, Han G-H, Ding X, et al. Role of macrophages in peripheral nerve injury and repair. Neural Regeneration Research. 2019;14(8):1335. DOI: https://doi.org/10.4103/1673-5374.253510.
19. Chajkovs’kyj YuB, Sokurenko LM, Lytus VI. Korektsiya eksperymentalʹnoho mikromerkurializmu ta stan orhaniv nervovoyi systemy y imunnoho zakhystu. Ukrayinsʹkyy zhurnal suchasnykh problem toksykolohiyi. 2011;5(55):64. [in Ukrainian].
20. Shamalo SM. Condition of peripheral nerve rats under micromercurialism in the early stages after injury. World of Medicine and Biology. 2015;4.1(53):140-142.
21. .Barakat-Walter I, Kraftsik R. Stimulating effect of thyroid hormones in peripheral nerve regeneration: research history and future direction toward clinical therapy. Neural Regeneration Research. 2018;13(4):599. DOI: https://doi.org/10.4103/1673-5374.230274.
22. Chaudhary N, Pandey AS, Gemmete JJ, Hua Y, Huang Y, Gu Y, et al. Diffusion tensor imaging in hemorrhagic stroke. Experimental Neurology. 2015 Oct;272:88-96. DOI: https://doi.org/10.1016/j.expneurol.2015.05.011.
23. Dovgan IM, Savosko SI, Savosko AO, Melnyk NO, Kuraieva AV, Sokolowska IV, Bulgakova NV, Chaikovsky YB, Maznychenko AV. Experimental unilateral intracerebral hemorrhage induces delayed bilateral neurodegeneration of sciatic nerve fibres in rats. Acta Neurobiol Exp (Wars). 2022;82(4):477-488.

Публікація статті:

«Вісник проблем біології і медицини», 2023 Випуск 2, 169, 374-380 сторінки, код УДК 591.483+616-001+612.014.46+616.441-008.64+616-08+591.169.1

DOI:

10.29254/2077-4214-2023-2-169-374-380