Стецук Є. В., Шепітько В. І., Білаш С. М., Проніна О. М., Борута Н. В., Олійніченко Я. О.

ЗМІНА В КІЛЬКОСТІ CD 163+ МАКРОФАГІВ ІНТЕРСТИЦІЮ ЯЄЧКА ПРИ ХІМІЧНІЙ КАСТРАЦІЇ ТРИПТОРЕЛІНОМ

---

Показати/Завантажити PDF

Про автора:

Стецук Є. В., Шепітько В. І., Білаш С. М., Проніна О. М., Борута Н. В., Олійніченко Я. О.

Рубрика:

МОРФОЛОГІЯ

Тип статті:

Наукова стаття

Анотація:

У статті розглядається зміна кількісного показника клітин моноцитарномакрофагального ряду сполучної тканини яєчка за рецепторами СD163+ при хімічній кастрації триптореліном протягом 365 днів. Прогресуюче збільшення кількості СD163+ клітин (у 3,5 раза за рік) свідчить про формування стійкої популяції макрофагів М2-фенотипу. Це вказує на зміщення тканинного гомеостазу в бік анти запальної відповіді та спробу організму компенсувати структурні пошкодження паренхіми органу, спричинені гормональним дисбалансом. Найбільш інтенсивна проліферація та міграція СD163+ макрофагів відбувається у перші 90 діб та в період між 180-ю і 270-ю добою експерименту. Тривале накопичення М2- макрофагів на пізніх етапах (270-365 доби) може мати подвійне значення: з одного боку, це обмежує гостре запалення, а з іншого – створює передумови для надлишкового розростання сполучної тканини (фіброзу), оскільки саме цей підтип макрофагів стимулює активність фібробластів. Вихід показника на «плато» до 365-ї свідчить про завершення фази активної клітинної мобілізації та досягнення граничного рівня адаптаційної перебудови макрофагального резерву в умовах хронічної дії триптореліну. Динаміка змін в експресії CD163+ може слугувати надійним морфологічним маркером хронізації процесу та структурної перебудови яєчка при застосуванні агоністів гонадотропін-рилізинг гормону.

Теги:

Список цитованої літератури:

1. Wang M, Yang Y, Cansever D, Wang Y, Kantores C, Messiaen S, et al. Two populations of self-maintaining monocyte-independent macrophages exist in adult epididymis and testis. 2021;118(1):e2013686117. DOI: 10.1073/pnas. 2013686117.
2. Mossadegh-Keller N, Sieweke MH. Testicular macrophages: Guardians of fertility. Cell Immunol. 2018;330:120-125. DOI: 10.1016/j. cellimm.2018. 03.009.
3. Likhachov VK, Vashchenko VL, Taranovska OO. Impact of preventive therapy on regulating mechanisms of decidual macrophage polarization in pregnant women with high risk of preeclamplsia. Wiad Lek. 2021;74(9 cz 1):2123-2127.
4. Tkachenkо IM, Dmytrenko MI, Cholovskyi MО, Korovina LD, Mamontova TV. Impregnation of oral mucosa over impacted teeth by subpopulations of macrophages M1 and M2. Wiad Lek. 2021;74(6):1451-1456.
5. Yemchenko YaO, Shynkevych VI, Ishcheikin KE, Kaidashev IP. PPAR-Gamma Agonist Pioglitazone Reduced CD68+ but Not CD163+ Macrophage Dermal Infiltration in Obese Psoriatic Patients. PP AR Res. 2020;2020:4548012.
6. Zelinka-Khobzey MM, Tarasenko KV, Mamontova TV, Shlykova OA. Characteristics of CD68+ and CD163+ expression in placenta of women with preeclampsia and obesity. Wiad Lek. 2021;74(9 cz 1):2152-2158.
7. Balgetir MK, Tektemur NK, Tektemur A, Türk G, Güngör İH, Cihangiroglu AC, et al. Determination of M1/M2 Macrophage Polarization in Ipsilateral and Contralateral Rat Testis Tissue Following Unilateral Torsion/Detorsion. Reprod Sci. 2024;31(7):2092-2102. DOI: 10.1007/s43032-024-01519-6.
8. Tsai SJ, Li LH, Chen WJ, Huang EY, Huang CY, Brannigan RE, et al Prediction of microdissection testicular sperm extraction outcomes of azoospermic patients post-chemotherapy using cyclophosphamide equivalent dose. J Assist Reprod Genet. 2023;40(8):2013-2020. DOI:10.1007/s10815-023-02870-4.
9. Garza S, Chen L, Galano M, Cheung G, Sottas C, Li L, et al. Mitochondrial dynamics, Leydig cell function, and age-related testosterone deficiency. FASEB J. 2022;36(12):e22637. DOI: 10.1096/fj.202201026R.
10. Li S, Liu L, Luo G, Yuan Y, Hu D, Xiao F. The crosstalk between M1 macrophage polarization and energy metabolism disorder contributes to polystyrene nanoplastics-triggered testicular inflammation. Food Chem Toxicol. 2023;180:114002. DOI: 10.1016/j.fct.2023.114002.
11. Botté MC, Lerrant Y, Lozach A, Bérault A, Counis R, Kottler ML. LH down-regulates gonadotropin-releasing hormone (GnRH) receptor, but not GnRH, mRNA levels in the rat testis. J Endocrinol. 1999;162(3):409-415. DOI: 10.1677/joe.0.1620409.
12. Stetsuk YeV, Akimov OYe, Shepitko KV, Goltsev AN. Role of nitric oxide in development of fibrotic changes in rats’ testes after 270 day central deprivation of testosterone synthesis. World of medicine and biology. 2020;73(3): 211-215. DOI: 10.26724/2079-8334-2020-3-73-211-215.
13. Bahriy MM, Dibrova VA, Popadynets OH, Hryshchuk MI. Metodyky morfolohichnykh doslidzhen. Vinnytsya: Nova knyha; 2016. 328 s. [in Ukrainian].
14. Chung JY, Brown S, Chen H, Liu J, Papadopoulos V, Zirkin B. Effects of pharmacologically induced Leydig cell testosterone production on intratesticular testosterone and spermatogenesis. Biol Reprod. 2020;102(2):489-498. DOI: 10.1093/biolre/ioz174.
15. Hotta Y, Kataoka T, Kimura K. Testosterone Deficiency and Endothelial Dysfunction: Nitric Oxide, Asymmetric Dimethylarginine, and Endothelial Progenitor Cells. Sex Med Rev. 2019;7(4):661-668. DOI: 10.1016/j.sxmr. 2019.02.005.
16. Zheng W, Zhang S, Jiang S, Huang Z, Chen X, Guo H, et al. Evaluation of immune status in testis and macrophage polarization associated with testicular damage in patients with nonobstructive azoospermia. Am J Reprod Immunol. 2021;86(5):e13481. DOI: 10.1111/aji.13481.
17. Tang Fui MN, Hoermann R, Wittert G, Grossmann M. Testicular volume and clinical correlates of hypothalamic-pituitary-testicular function: A cross-sectional study in obese men. Asian J Androl. 2020;22(4):354-359. DOI: 10.4103/aja.aja_96_19.

Публікація статті:

«Вісник проблем біології і медицини», 2025 Випуск 4, 179, 350-358 сторінки, код УДК 616.63:477 + 175.67:599.433

DOI:

10.29254/2077-4214-2025-4-179-350-358