Забродська О. С.

ОСОБЛИВОСТІ СТРУКТУРНОЇ ОРГАНІЗАЦІЇ ПУПКОВОЇ ВЕНИ В ПОСТНАТАЛЬНОМУ ПЕРІОДІ ОНТОГЕНЕЗУ

---

Показати/Завантажити PDF

Про автора:

Забродська О. С.

Рубрика:

МОРФОЛОГІЯ

Тип статті:

Наукова стаття

Анотація:

Пупкова вена є одним із ключових компонентів фетального кровообігу. Вона забезпечує плід киснем та поживними речовинами, що є необхідними для його розвитку. Зміни, які відбуваються з цією веною після народження, мають важливе значення для адаптації новонародженого до позаутробного життя. Мета дослідження. Встановити особливості структурної організації пупкової вени в зрілому і старечому віці. Об’єкт і методи дослідження. Для дослідження використано 6 об’єктів зрілого віку першого періоду, 7 об’єктів зрілого віку другого періоду, 5 об’єктів старечого віку. Використаний комплекс морфологічних методів дослідження: мікроскопічне, виготовлення гістологічних зрізів, морфометрія, що були проведені за загальноприйнятими методиками. Результати. В ході дослідження було виявлено значний вміст еластичних і колагенових волокон, а також високий рівень клітинної активності, що забезпечує функціональну цілісність венозної стінки. Дослідження показало, що венозна стінка пупкової вени має складну багатошарову організацію, до складу якої входять еластичні та колагенові волокна, що забезпечують її механічну міцність та еластичність. Ендотеліоцити формують внутрішній шар, відповідаючи за бар’єрну функцію та регуляцію обміну речовин. Перицити, розташовані у медіальному шарі, забезпечують структурну стабільність та сприяють адаптації вени до гемодинамічних змін. Мікроскопічно в другому періоду зрілого віку пупкова вена верхнього сегменту не має чіткої структурної організації. У старечому віці постнатального періоду пупкова вена, яка перетворилась на круглу зв’язку печінки демонструє більш виражені вікові зміни, характерні для процесів дегенерації та ремоделювання тканин. Висновки. Отже, пупкова вена у зрілому та старечому віці зазнає повної інволюції і стає неактивним структурним елементом, що зберігається у вигляді фіброзного тяжа без виконання жодної функції, характерної для кровоносних судин. В першому та другому періоді зрілого віку стінка пупкової вени містить велику кількість гладких міоцитів, перицитів та колагенових волокон, зменшується кількість еластичних волокон. В старечому віці стінка пупкової вени характеризується значною кількістю фібробластів та колагенових волокон, відзначаються поодинокі еластичні волокна. Більшу частину просвіту займають конгломерати жирових клітин та відкладення кальцію. Особливість структурної організації пупкової вени дозволяє виконати подальшу її реканалізацію.

Теги:

Список цитованої літератури:

1. Ni W, Zou Z, Jiang P, Wang S. Sevoflurane alleviates inflammation, apoptosis and permeability damage of human umbilical vein endothelial cells induced by lipopolysaccharide by inhibiting endoplasmic reticulum stress via upregulating RORα. Prostaglandins Other Lipid Mediat. 2024;172:106821. DOI: 10.1016/j.prostaglandins.2024.106821.
2. Achiron R, Kassif E, Kivilevitch Z. Fetal intrahepatic Umbilical-Porto-Systemic venous shunts (IHUPSVS): In-utero anatomic classification. Eur J Obstet Gynecol Reprod Biol. 2022;276:179-184. DOI: 10.1016/j.ejogrb. 2022.07.022.
3. Opheim GL, Moe Holme A, Blomhoff Holm M, Melbye Michelsen T, Muneer Zahid S, Paasche Roland MC, et al. The impact of umbilical vein blood flow and glucose concentration on blood flow distribution to the fetal liver and systemic organs in healthy pregnancies. FASEB J. 2020;34(9):12481-12491. DOI: 10.1096/fj.202000766R.
4. Karmegaraj B. Normal Fetal Umbilical, Portal, and Hepatic Venous System: Four-dimensional STIC Rendering. Radiology. 2021;299(1):51. DOI: 10.1148/radiol.2021203300.
5. Zhu R, Hu X, Xu W, Wu Z, Zhu Y, Ren Y, et al. LncRNA MALAT1 inhibits hypoxia/reoxygenation-induced human umbilical vein endothelial cell injury via targeting the microRNA-320a/RAC1 axis. Biol Chem. 2020;401(3):349-360. DOI: 10.1515/hsz-2019-0316.
6. Carcopino C, Rossi E, Mebarki M, El Hamaoui D, Gaussem P, Larghero J, et al. Understanding the Angiogenic Characteristics of ClinicalGrade Mesenchymal Stromal Cells Isolated from Human Umbilical Cord. Stem Cell Rev Rep. 2024;20(5):1353-1356. DOI: 10.1007/ s12015-024-10712-8.
7. Laurino A, Franceschini A, Pesce L, Cinci L, Montalbano A, Mazzamuto G, et al. A Guide to Perform 3D Histology of Biological Tissues with Fluorescence Microscopy. Int J Mol Sci. 2023;24(7):6747. DOI: 10.3390/ijms24076747.
8. Slobodian OM, Zabrodska OS. Stanovlennya topohrafiyi pupkovoyi veny u peredplodiv. Klinichna anatomiya ta operatyvna khirurhiya. 2021;20(2):35-41. DOI: 10.24061/1727-0847.20.2.2021.16. [in Ukrainian].
9. Huang Y, Liang B, Chen X. Exosomal circular RNA circ_0074673 regulates the proliferation, migration, and angiogenesis of human umbilical vein endothelial cells via the microRNA-1200/MEOX2 axis. Bioengineered. 2021;12(1):6782-6792. DOI: 10.1080/21655979.2021.1967077.
10. Sun AY, Lai JJ, Du HL. Modification of Proliferation and Morphology in Human Umbilical Vein Endothelial Cells via in vitro High-Frequency, Low-Energy, Linear-Focused, Continuous Ultrasound Stimulation. Biomed Environ Sci. 2020;33(9):727-730. DOI: 10.3967/bes2020.096.
11. Putra M, Peek EEH, Devore GR, Hobbins JC. Umbilical Vein Flows and Cardiac Size, Shape, and Ventricular Contractility in Fetuses With Estimated Weight Less-Than 10th Centile. J Ultrasound Med. 2024;43(11):2069-2084. DOI: 10.1002/jum.16536.
12. Tong P, Zhang J, Liu S, An J, Jing G, Ma L, et al. miRNA-142-3p aggravates hydrogen peroxide-induced human umbilical vein endothelial cell premature senescence by targeting SIRT1. Biosci Rep. 2024;44(5):BSR20231511. DOI: 10.1042/BSR20231511.
13. Allen MK, Minto O. Four-Vessel Umbilical Cord: Supernumerary Right Umbilical Vein With No Associated Congenital Anomalies. Cureus. 2024;16(8):e67283. DOI: 10.7759/cureus.67283.
14. Engür-Öztürk S, Kaya-Tİlkİ E, Cantürk Z, Dİkmen M. Enhanced angiogenesis of human umbilical vein endothelial cells via THP-1-derived M2c-like macrophages and treatment with proteasome inhibitors ‘bortezomib and ixazomib’. APMIS. 2024;132(8):594-607. DOI: 10.1111/ apm.13426.
15. Liu J, Dong J, Pei X. Apoptotic Extracellular Vesicles Derived from Human Umbilical Vein Endothelial Cells Promote Skin Repair by Enhancing Angiogenesis: From Death to Regeneration. Int J Nanomedicine. 2024;19:415-428. DOI: 10.2147/IJN.S441453.
16. Liu B, Song F, Zhou X, Wu C, Huang H, Wu W, et al. NEDD4L is a promoter for angiogenesis and cell proliferation in human umbilical vein endothelial cells. J Cell Mol Med. 2024;28(8):1-11. DOI: 10.1111/jcmm. 18233.
17. Jiang W, Zhong J, Ouyang Z, Shen J, Qiu Y, Zeng Y. Spatial Constraints of Rectangular Hydrogel Microgrooves Regulate the Morphology and Arrangement of Human Umbilical Vein Endothelial Cells. Sichuan Da Xue Xue Bao Yi Xue Ban. 2024;55(1):87-94. DOI: 10.12182/20240160402.
18. Pinto TS, Feltran GDS, Fernandes CJDC, de Camargo Andrade AF, Coque AC, Silva SL, et al. Epigenetic changes in shear-stressed endothelial cells. Cell Biol Int. 2024;48(5):665-681. DOI: 10.1002/cbin.12138.

Публікація статті:

«Вісник проблем біології і медицини», 2025 Випуск 1, 176, 411-418 сторінки, код УДК 611.149.8.013.018-053.31/.053.9

DOI:

10.29254/2077-4214-2025-1-176-411-418