Євчук Ю. І., Пантус А. В.

КЛІНІКО-ЕКСПЕРИМЕНТАЛЬНЕ ОБГРУНТУВАННЯ ДОЦІЛЬНОСТІ ЗАСТОСУВАННЯ КОМБІНОВАНОГО ФІБРИНО-КІСТКОВОГО СКАФФОЛДУ З ВИРАЖЕНИМ ЛОКАЛЬНИМ ПРОТИМІКРОБНИМ ЕФЕКТОМ

---

Показати/Завантажити PDF

Про автора:

Євчук Ю. І., Пантус А. В.

Рубрика:

СТОМАТОЛОГІЯ

Тип статті:

Наукова стаття

Анотація:

У статті розглядається ефективність розробленої нової методики покращення ефективності кісткової аугментації при заміщенні дефектів кісткової тканини. Метою дослідження було встановлення ефективності відновлення кісткових дефектів щелеп ало-аутологічним матеріалом, отриманим шляхом одномоментного центрифугування гранул демінералізованого кістково-пластичного матеріалу і венозної крові пацієнта. Для клінічних досліджень були відібрані 90 хворих віком від 20 до 40 років з радикулярними кістами щелеп. Усі пацієнти були розділені на І, ІІ та ІІІ групи, яким проводили операцію цистектомію та кісткову пластику. В І групі використовували скаффолд, який готували за розробленим нами протоколом. Проведений мікробіологічний аналіз свідчив про більш виражений комулятивний ефект лінкоміцину на малих концентраціях у відтиснутій фракції плазми 18,75 мг/мл та фібриновому матриксу 9,4 мг/мл. Результати наведених післяопераційних клінічних та рентгенологічних досліджень підтверджують ефективність розробленої нами методики. Про це свідчив високий відсоток 83,3% пацієнтів І групи з повним відновленням кісткового дефекту, що корелювало із показниками щільності кісткової тканини від 575,45+20,55 до 636,90+16,64 HU, які відповідали інтактній кістці. Натомість, у ІІ та ІІІ групах тільки у 16 (53,3%) та відповідно у 13 (43,3%) відмічалось повноцінне повне відновлення кісткової тканини. Проведений клінічний та рентгенологічний аналіз показав ефективність розробленої нами методики, на що вказували позитивні результати у вигляді повного відновлення кісткової тканини у 83,3% пацієнтів І групи та тільки у 53,3% пацієнтів ІІ групи та 43,3% пацієнтів у ІІІ групі.

Теги:

Список цитованої літератури:

1. Korniyenko MM. Vedennya rannoho pislyaoperatsiynoho periodu pislya tsystektomiyi iz zastosuvannyam preparatu na osnovi benzydaminu hidrokhlorydu. Novyny stomatolohiyi. 2015;2:45-8. [in Ukrainian].
2. Lytvynets-Holutyak UYe. Doslidzhennya makro- ta mikroelementnoho statusu u khvorykh na odontohenni kysty. Aktualni problemy suchasnoyi medytsyny: Visnyk Ukrayinskoyi medychnoyi stomatolohichnoyi akademiyi. 2013;3(43):47-50. [in Ukrainian].
3. Ruzin GP, Tkachenko OV. Klinicheskiye proyavleniya toksicheskogo osteomiyelita v zavisimosti ot davnosti upotrebleniya narkotika. Ukrainskiy stomatologíchniy almanakh. 2015; 1: 47-52. [in Ukrainian].
4. Avetikov DS, Stavytskyy SA, Lokes KP, Yatsenko IV. Otsinka efektyvnosti auhmentatsiyi alveolyarnoho hrebnya na etapi pidhotovky do dentalnoyi implantatsiyi. Visnyk problem biolohiyi i medytsyny. 2016;1(131):240-2. [in Ukrainian].
5. Pavlenko AV, Dmitriyeva EA, Luzin VI. Gistologicheskoye stroyeniye regenerata pri zapolnenii kostnogo defekta materialami easygraft i trikaltsiyfosfatom. Morfologiya. 2011;5(2):49-54. [in Ukrainian].
6. Pavlenko OV, Dmytriyeva YeO. Morfolohichni osnovy vyboru kistkovoplastychnykh materialiv u parodontolohiyi. Morfolohiya. 2011;5(1):5- 12. [in Ukrainian].
7. Berwig KH, Baldasso C, Dettmer A. Production and characterization of poly(3-hydroxybutyrate) generated by Alcaligenes latus using lactose and whey after acid protein precipitation process. Bioresour. Technol. 2016;218:31-7.
8. Hapach LA, VanderBurgh JA, Miller JP, Reinhart-King CA. Manipulation of in vitro collagen matrix architecture for scaffolds of improved physiological relevance. Physical Biology. 2015;12(6):061002. DOI: 10.1088/1478-3975/12/6/061002.
9. Pantus AV, Rozhko MM, Paliychuk VI, Kovalchuk NY, Melnyk NS. Microstructure of biopolymer micro-fibrous scaffold and its influence on the ability to retain medicines and tissue regeneration. Georgian medical news. 2023;3(336):37-44.
10. Crisci A, Lombardi D, Serra E, Lombardi G, Cardillo F, Crisci M. Standardized protocol proposed for clinical use of L-PRF and the use of L-PRF Wound Box®. J Unexplored Med Data. 2017;2:77-87. DOI: 10.20517/2572-8180.2017.17.
11. Kubesch A, Barbeck M, Al-Maawi S, Orlowska A, Booms P, Sader R, et al. A low-speed centrifugation concept leads to cell accumulation and vascularization of solid platelet-rich fibrin: An experimental study in vivo. Platelets. 2019;30(3):329-340. DOI:10.1080/09537104.2018.1445835. [
12. Lee HM, Shen EC, Shen JT, Fu E, Chiu HC, Hsia YJ. Tensile strength, growth factor content and proliferation activities for two platelet concentrates of platelet-rich fibrin and concentrated growth factor. J. Dent. Sci. 2020;15(2):141-146. DOI: 10.1016/j.jds.2020.03.011.
13. Li W, Sigley J, Pieters M, Helms C, Nagaswami C, Weisel JW, et al. Fibrin Fiber Stiffness Is Strongly Affected by Fiber Diameter, but Not by Fibrinogen Glycation. Biophys. J. 2016;110(6):1400-1410. DOI: 10.1016/j.bpj.2016. 02.021.
14. McLellan J, Plevin S. Temporal release of growth factors from platelet- rich fibrin (PRF) and platelet-rich plasma (PRP) in the horse: a comparative in vitro analysis. International Journal of Applied Research in Veterinary Medicine. 2014;12(1):48-57.
15. Caymaz G, Uyanik O. Comparison of the effect of advanced platelet-rich fibrin and leukocyte- and platelet-rich fibrin on outcomes after removal of impacted mandibular third molar: A randomized split-mouth study. Niger. J. Clin. Pract. 2019;22(4):546-552. DOI: 10.4103/njcp.njcp_473_18.
16. Canellas JVDS, Medeiros PJD, Figueredo CMDS, Fischer RG, Ritto FG. Platelet-richfibrin in oral surgical procedures: A systematic review and meta-analysis. Int. J. Oral Maxillofac. Surg. 2019;48(3):395-414. DOI: 10.1016/j.ijom.2018.07.007.
17. Caruana A, Savina D, Macedo JP, Soares SC. From Platelet- Rich Plasma to Advanced Platelet-Rich Fibrin: Biological Achievements and Clinical Advances in Modern Surgery. Eur. J. Dent. 2019;13(2):280-286. DOI: 10.1055/s-0039-1696585.
18. Crisci A, Manfredi S, Crisci M. Fibrinrich in Leukocyte- Platelets (L-PRF) and Injectable Fibrin Rich Platelets (I-PRF), two opportunity in regenerative surgery: Review of the sciences and literature. IOSR Journal of Dental and Medical Sciences (IOSR-JDMS). 2019;18:66-79.
19. Choukroun J, Ghanaati S. Reduction of relative centrifugation force within injectable platelet-rich-fibrin (PRF) concentrates advances patients’ own inflammatory cells, platelets and growth factors: The first introduction to the low speed centrifugation concept. Eur. J. Trauma Emerg. Surg. 2018;44(1):87-95. DOI: 10.1007/s00068-017-0767-9.
20. Siawasch SAM, Andrade C, Castro AB, Teughels W, Temmerman A, Quirynen M. Impact of local and systemic antimicrobials on leukocyte- and platelet rich fibrin: an in vitro study. Scientific Reports. 2022;12(1):2710. DOI: 10.1038/s41598-022-06473-4.
21. Crisci A, Barillaro MC, Lepore G, Cardillo F. L-PRF Membrane (FibrinRich in Platelets and Leukocytes) and Its Derivatives (A-PRF, i- PRF) are Help ful as a Basis of Stem Cells in Regenerative Injury Treatment: Trial Work on the Horse. International Blood Research & Reviews. 2019;10(2):1-14.
22. Crisci A, Benincasa G, Crisci M, Crisci F. Leukocyte Platelet-Rich Fibrin (L-PRF), a new biomembrane useful in tissue repair: basic science and literature review. Biointerface Research in Applied Chemistry. 2018;8(5):3635-43.
23. Kim BJ, Kwon TK, Baek HS, Hwang DS, Kim CH, Chung IK, et al. A comparative study of the effectiveness of sinus bone grafting with recombinant human bone morphogenetic protein 2-coated tricalcium phosphate and platelet-rich fibrin-mixed tricalcium phosphate in rabbits. Oral Surg Oral Med Oral Pathol Oral Radiol. 2012;113(5):583-92. DOI: 10.1016/j.tripleo.2011.04.029.
24. De Almeida NCPM, Dos Santos NBM, Completo AMG, De Oliveira FGV. Tensile strength assay comparing the resistance between two different autologous platelet concentrates (leucocyte-platelet rich fibrin versus advanced- plateletrichfibrin): A pilotstudy. Int. J. Implant Dent. 2021;7(1):1. DOI: 10.1186/s40729-020-00284-w.
25. El Bagdadi K, Kubesch A, Yu X, Al-Maawi S, Orlowska A, Dias A, et al. Reduction of relative centrifugal forces increases growth factor release within solid platelet- rich fibrin (PRF)-based matrices: a proof of concept of LSCC (low speed centrifugation concept). European Journal of Trauma and Emergency Surgery. 2019;45(3):467-79.
26. Polak D, Clemer-Shamai N, Shapira L. Incorporating antibiotics into platelet-rich fibrin: a novel antibiotics slow-release biological device. J Clin Periodontol. 2019;46:241-247. DOI: 10.1111/jcpe.13063.
27. Wang S, Li Y, Li S, Yang J, Tang R, Li X, et al. Platelet-rich plasma loaded with antibiotics as an affiliated treatment for infected bone defect by combining wound healing property and antibacterial activity. Platelets. 2021;32(4):479-491. DOI: 10.1080/09537104.2020.1759792.
28. Whitman WB, DeVos P, Dedysh S. Bergey’s manual of systematics of Archaea and Bacteria. Hoboken, New Jersey: John Wiley & Sons; 2015.
29. Salam MA, Al-Amin MY, Pawar JS, Akhter N, Lucy IB. Conventional methods and future trends in antimicrobial susceptibility testing. Saudi J Biol Sci. 2023;30(3):103582. DOI: 10.1016/j.sjbs.2023.103582.
30. Belanger CR, Hancock REW. Testing physiologically relevant conditions in minimal inhibitory concentration assays. Nat Protoc. 2021;16(8):3761-3774. DOI: 10.1038/s41596-021-00572-8.

Публікація статті:

«Вісник проблем біології і медицини», 2025 Випуск 3, 178, 526-540 сторінки, код УДК 616.314-71+616.314-089+616.314-007

DOI:

10.29254/2077-4214-2025-3-178-526-540