Дундюк-Березіна С. І., Слободян О. М.

СУЧАСНИЙ СТАН НОРМАЛЬНОГО РОЗВИТКУ ЗУБОЩЕЛЕПНОЇ СИСТЕМИ У ЛАБОРАТОРНИХ ТВАРИН

---

Показати/Завантажити PDF

Про автора:

Дундюк-Березіна С. І., Слободян О. М.

Рубрика:

ОГЛЯДИ ЛІТЕРАТУРИ

Тип статті:

Наукова стаття

Анотація:

В результаті аналізу літературних джерел встановлено, що дослідження та виявлення процесів становлення зубощелепної системи лабораторних тварин, зокрема щурів дозволяє глибше зрозуміти еволюційні, структурні та функціональні аспекти одонтогенезу, закласти базис для розробки біоінженерних механізмів відновлення зубів, а також сприяє створенню експериментальних моделей захворювань зубів та щелеп (наприклад, карієс, пародонтит, остеопороз, порушення розвитку зубів). Важливістю модельних організмів, до прикладу щурів, є можливість виявлення просторово-часової динаміки становлення зубощелепної системи упродовж періоду ембріогенезу. Класично прийнятою є чотирьох стадійна модель розвитку зуба: плакодна (placode stage), зачаткова (bud stage), капсульна (ковпачкова) (cap stage) і стадія формування коронки (bell stage). У зубощелепній системі щура присутні два типи морфологічно та функціонально різних типів зубів: наявні парні різці, та моляри. Зубощелепна система щурів є динамічною системою, що поєднує в собі складну морфологічну організацію з високим рівнем функціональної пластичності та робить щура цінною моделлю для вивчення не лише нормального розвитку, а й патологій зубощелепної ділянки, а також для тестування методів відновлення тканин у експериментальній стоматології.

Теги:

Список цитованої літератури:

1. Munshi-South J, Garcia JA, Orton D, Phifer-Rixey M. The evolutionary history of wild and domestic brown rats (Rattus norvegicus). Sci ence. 2024;385:1292-7. DOI: 10.1126/science.adp1166.
2. Baker S, Ayers M, Beausoleil N, Belmain S, Berdoy M, Buckle A, et al. An assessment of animal welfare impacts in wild Norway rat (Rattus norvegicus) management. Animal Welfare. 2022;31(1):51-68. DOI: 10.7120/09627286. 31.1.005.
3. Guosheng W, Shengxi H, Chi J, Sun H, Ye H, Bhikoo C, et al. The differences of root morphology and root length between different types of impacted maxillary central incisors: a retrospective cone-beam computed tomography study. Am J Orthod Dentofacial Orthop. 2022;161(4):548-556. DOI: 10.1016/j.ajodo.2020.09.037.
4. Zhang Y, Gao J, Wang X, Wang J, Zhang X, Fang S, et al. Biomechanical factors in the open gingival embrasure region during the intrusion of mandibular incisors: a new model through finite element analysis. Front Bioeng Biotechnol. 2023;11:1149472. DOI: 10.3389/ fbioe.2023.1149472.
5. Mu Y, Tian R, Xiao L, Sun D, Zhang Z, Xu S, et al. Molecular Evolution of Tooth-Related Genes Provides New Insights into Dietary Adap tations of Mammals. J Mol Evol. 2021;89:458-71. DOI: 10.1007/s00239-021-10017-1.
6. Zhu Y, Gu L, Wang J, Han J, Gou J, Wu Z. DNA methylation profiling of CpG islands in trigeminal ganglion of rats with orofacial pain in duced by experimental tooth movement. BMC Oral Health. 2024;24:1474. DOI: 10.1186/s12903-024-05269-4.
7. Gao Y, Min Q, Li X, Liu L, Lv Y, Xu W, et al. Immune System Acts on Orthodontic Tooth Movement: Cellular and Molecular Mechanisms Biomed Res Int. 2022;2022:9668610. DOI: 10.1155/2022/9668610.
8. Feng Wang, Jiang W, Chen B, Li R. The Mechanism of MSX1 and PAX9 Implication in Tooth Development Based on the Weighted Gene Co-Expression Network Analysis. Russ J Dev Biol. 2021;52:187-98. DOI: 10.1134/S1062360421030085.
9. Luo SY, Wang S, Liu ZX, Bian Q, Wang XD. Six1 Regulates Mouse Incisor Development by Promoting Dlx1/2/5 Expression. Journal of Dental Research. 2024;103(10):1017-27. DOI: 10.1177/00220345241256286.
10. Fujikawa K, Nonaka N, Wang X, Shibata S, et al. An in situ hybridization study of syndecan family during the late stages of developing mouse molar tooth germ. Anat Sci In. 2022;97:358-68. DOI: 10.1007/s12565-022-00647-w.
11. Kim HJ, Irfan M, Sreekumar S, Phimon A, Kim S, Chung S. CRISPR-edited DPSCs constitutively expressing BDNF enhance dentin regen eration in injured teeth. eLife. 2025;14:RP105153 DOI: 10.7554/eLife.105153.3.
12. Jing J, Zhang M, Guo T, Pei F, Yang Y, Chai Y, et al. Rodent incisor as a model to study mesenchymal stem cells in tissue homeostasis and repair. Frontiers in dental medicine. 2022;3:1068494. DOI: 10.3389/fdmed.2022. 1068494.
13. Christensen MM, Hallikas O, Das Roy R, Väänänen V, Stenberg OE, et al. The developmental basis for scaling of mammalian tooth size. Proc. Natl. Acad. Sci. U.S.A. 2023;120(25):e2300374120. DOI: 10.1073/pnas. 2300374120.
14. Hermans F, Hemeryck L, Lambrichts I, Bronckaers A, Vankelecom H. Intertwined signaling pathways governing tooth development: a give and-take between canonical wnt and shh. Frontiers in cell and developmental biology. 2021;9:758203. DOI: 10.3389/fcell.2021.758203.
15. Hallikas O, Das Roy R, Christensen MM, Renvoise E, Sulic A-M, Jernvall J. System-level analyses of keystone genes required for mam malian tooth development. Molecular and developmental evolution. 2020;336(1):7-17. DOI: 10.1002/jez.b.23009.
16. Ali S, Farooq I, Khurram SA. An illustrated guide to oral histology. Wiley; 2021. Chapter 1, Tooth development; p. 1-13. DOI: 10.1002/97811 19669616.ch1.
17. Nevoránková P, Šulcová M, Kavková M, Zimčík D, Balková SM, Peléšková K, et al. Region-specific gene expression profiling of early mouse mandible uncovered SATB2 as a key molecule for teeth patterning. Sci Rep. 2024;14:18212. DOI: 10.1038/s41598-024-68016-3.
18. Vonk J, Shackelford TK, eds. Encyclopedia of Animal Cognition and Behavior. Cham: Springer; 2022. Chapter, Rodentia Morphology; p. 6088-6090. DOI: 10.1007/978-3-319-55065-7_751.
19. Pei SL, Chen RS, Chen MH. The crucial role of centrioles in tooth growth and development. Journal of the Formosan Medical association. 2025;124(3):271-7. DOI: 10.1016/j.jfma.2024.04.014.
20. Kliszcz J, Jekl V. Dentistry in Mice-like Rodents. Vet Clin North Am Exot Anim Pract. 2025;28(3):609-627. DOI: 10.1016/j.cvex.2025.06.001.
21. Hu S, Zheng C, Jiang P, Zhang Q, Liu Y, Dou L. 3D visualization of neurovascular networks in pulp-exposed rat molars using tissue clearing techniques. Odontology. 2025;113(4):1659-1666. DOI: 10.1007/s10266-025-01092-7.
22. Roth DM, Bayona F, Baddam P, Graf D. Craniofacial Development: Neural Crest in Molecular Embryology. Head and Neck Pathol. 2021;15:1-15. DOI: 10.1007/s12105-021-01301-z.
23. Wei Y, Huang D, Chen SY, Jiang Y, Yang K, Hu Z, et al. Measurement of the root surface area in rat molars through three-dimensional modeling. Archives of Oral Biology. 2025;170:106132. DOI: 10.1016/j.archoralbio. 2024.106132.
24. Tokavanich N, Wein MN, English JD, Ono N, Ono W. The role of wint signaling in postnatal tooth root development. Frontiers in dental medicine. 2021;2:769134. DOI: 10.3389/fdmed.2021.769134.
25. Vu TH, Takechi M, Shimizu M, Kitazawa T, Higashiyama H, Iwase A, et al. Dlx5-augmentation in neural crest cells reveals early development and differentiation potential of mouse apical head mesenchyme. Sci Rep. 2021;11:2092. DOI: 10.1038/s41598-021-81434-x.

Публікація статті:

«Вісник проблем біології і медицини», 2026 Випуск 1, 180, 73-81 сторінки, код УДК 611.314.018.019

DOI:

10.29254/2077-4214-2026-1-180-73-81