АНАЛІЗ ЕФЕКТИВНОСТІ РОЗРОБЛЕНОЇ МЕТОДИКИ ОДНОЧАСНОГО ФОРМУВАННЯ КОМБІНОВАНОГО ФІБРИНО-КІСТКОВОГО СКАФОЛДУ ПРИ СИНУС-ЛІФТ ТЕХНІЦІ

Челій А. О.

АНАЛІЗ ЕФЕКТИВНОСТІ РОЗРОБЛЕНОЇ МЕТОДИКИ ОДНОЧАСНОГО ФОРМУВАННЯ КОМБІНОВАНОГО ФІБРИНО-КІСТКОВОГО СКАФОЛДУ ПРИ СИНУС-ЛІФТ ТЕХНІЦІ


Показати/Завантажити PDF

Про автора:

Челій А. О.

Рубрика:

СТОМАТОЛОГІЯ

Тип статті:

Наукова стаття

Анотація:

В статті розглядаються основні підходи та напрямки до покращення ефективності кісткової аугментації при виконанні синус-ліфт техніки. Метою дослідження було підвищення ефективності синус ліфт техніки ало-аутологічним матеріалом, отриманим шляхом одномоментного центрифугування гранул кістково-пластичного матеріалу та аутологічного кістково-пластичного матеріалу і венозної крові пацієнта. Для клінічних досліджень були відібрані 60 хворих віком від 20 до 40 років з атрофією альвеолярного відростка верхньої щелепи. Усі пацієнти були розділені на І та ІІ групи, яким проводили операцію синус-ліфт техніку та кісткову пластику. В І групі використовували скафолд, який готували за розробленим нами протоколом. Наведені нами результати післяопераційних клінічних та рентгенологічних досліджень підтверджують ефективність розробленої нами методики. Дана ефективність підтверджувалась позитивними результати синус-ліфт техніки у 28 (93,3 %) І групі пацієнтів та у 15 (62,5 %) пацієнтів ІІ групи. Про це свідчив виражений трабекулярний малюнок кісткової тканини щільністю 639,34+15,14 HU із сформованим структурно-цілісним аугментатом, що дав значний приріст висоти від 8 до 12 мм. Натомість, у ІІ групі в більшості пацієнтів переважав компактний сформований тип будови новоутвореної кісткової тканини щільністю 772,28+17,36 HU у поєднанні з структурно не сформованим гранулярним малюнком із пристінковим розприділенням матеріалу. На основі проведених досліджень нами визначено, що отриманий нами стабільний комбінований фібриновий скафолд володіє вираженим остеокондуктивним та остеоіндуктивним ефектом, що відображається у повноцінному відновленні кісткової тканини на всій площі аугментації.

Теги:

кісткова пластика, кісткова тканина, кістково-пластичний матеріал, регенерація кісткової тканини, синус-ліфт

Список цитованої літератури:

  1. Kim BJ, Kwon TK, Baek HS, Hwang DS, Kim CH, Chung IK, et al. A comparative study of the effectiveness of sinus bone grafting with re combinant human bone morphogenetic protein 2-coated tricalcium phosphate and platelet-rich fibrin-mixed tricalcium phosphate in rabbits. Oral Surg Oral Med Oral Pathol Oral Radiol. 2012;113(5):583-92. DOI: 10.1016/j.tripleo.2011.04.029.
  2.  Amam MA, Abdo A, Alnour A, Amam A, Jaafo MH. Comparison of calcium sulfate and tricalcium phosphate in bone grafting after sinus lifting for dental implantation: A randomized controlled trial. Dent Med Probl. 2023;60(2):239-246. DOI: 10.17219/dmp/151983.
  3.  Okada T, Kanai T, Tachikawa N, Munakata M, Kasugai S. Long-term radiographic assessment of maxillary sinus floor augmentation using beta-tricalcium phosphate: Analysis by cone-beam computed tomography. Int J Implant Dent. 2016;2(1):8. DOI: 10.1186/s40729-016-0042-6.
  4. Oba Y, Tachikawa N, Munakata M, Okada T, Kasugai S. Evaluation of maxillary sinus floor augmentation with the crestal approach and beta-tricalcium phosphate: A cone-beam computed tomography 3- to 9-year follow-up. Int J Implant Dent. 2020;6(1):27. DOI: 10.1186/s40729-020-00225-7.
  5.  Avetikov DS, Stavytskyi SA, Lokes KP, Yatsenko IV. Otsinka efektyvnosti auhmentatsii alveoliarnoho hrebnia na etapi pidhotovky do dentalnoi implantatsii. Visnyk problem biolohii i medytsyny. 2016;1(131):240-2. [in Ukrainian].
  6. Pavlenko AV, Dmitrieva EA, Luzin VI. Histolohicheskoye stroeniye regenerata pri zapolnenii kostnogo defekta materialami Easygraft i trikaltsiyfosfatom. Morfologiya. 2011;5(2):49-54. [in Ukrainian].
  7.  Pavlenko OV, Dmytriieva YeO. Morfolohichni osnovy vyboru kistkovoplastychnykh materialiv u parodontolohii. Morfolohiia. 2011;5(1):5-12. [in Ukrainian].
  8.  Berwig KH, Baldasso C, Dettmer A. Production and characterization of poly(3-hydroxybutyrate) generated by Alcaligenes latus using lactose and whey after acid protein precipitation process. Bioresour Technol. 2016;218:31-7.
  9.  Hapach LA, Vander Burgh JA, Miller JP, Reinhart-King CA. Manipulation of in vitro collagen matrix architecture for scaffolds of improved physiological relevance. Physical Biology. 2015;12(6):061002. DOI: 10.1088/1478-3975/12/6/061002.
  10.  Pantus AV, Rozhko MM, Paliychuk VI, Kovalchuk NY, Melnyk NS. Microstructure of biopolymer micro-fibrous scaffold and its influence on the ability to retain medicines and tissue regeneration. Georgian medical news. 2023;3(336):37-44.
  11.  Crisci A, Lombardi D, Serra E, Lombardi G, Cardillo F, Crisci M. Standardized protocol proposed for clinical use of L-PRF and the use of L-PRF Wound Box®. J Unexplored Med Data. 2017;2:77-87. DOI: 10.20517/2572-8180.2017.17.
  12.  Kubesch A, Barbeck M, Al-Maawi S, Orlowska A, Booms P, Sader R, et al. A low-speed centrifugation concept leads to cell accumulation and vascularization of solid platelet-rich fibrin: An experimental study in vivo. Platelets. 2019;30(3):329-340. DOI:10.1080/09537104.2018.1445835.
  13.  Lee HM, Shen EC, Shen JT, Fu E, Chiu HC, Hsia YJ. Tensile strength, growth factor content and proliferation activities for two platelet concentrates of platelet-rich fibrin and concentrated growth factor. J. Dent. Sci. 2020;15(2):141-146. DOI: 10.1016/j.jds.2020.03.011.
  14.  Li W, Sigley J, Pieters M, Helms C, Nagaswami C, Weisel JW, et al. Fibrin Fiber Stiffness Is Strongly Affected by Fiber Diameter, but Not by Fibrinogen Glycation. Biophys. J. 2016;110(6):1400-1410. DOI: 10.1016/j.bpj.2016. 02.021.
  15.  McLellan J, Plevin S. Temporal release of growth factors from platelet- rich fibrin (PRF) and platelet-rich plasma (PRP) in the horse: a comparative in vitro analysis. International Journal of Applied Research in Veterinary Medicine. 2014;12(1):48-57.
  16.  Caymaz G, Uyanik O. Comparison of the effect of advanced platelet-rich fibrin and leukocyte- and platelet-rich fibrin on outcomes after removal of impacted mandibular third molar: A randomized split-mouth study. Niger. J. Clin. Pract. 2019;22(4):546-552. DOI: 10.4103/njcp. njcp_473_18.
  17.  Canellas JVDS, Medeiros PJD, Figueredo CMDS, Fischer RG, Ritto FG. Platelet-richfibrin in oral surgical procedures: A systematic review and meta-analysis. Int. J. Oral Maxillofac. Surg. 2019;48(3):395-414. DOI: 10.1016/j.ijom.2018.07.007.
  18.  Caruana A, Savina D, Macedo JP, Soares SC. From Platelet- Rich Plasma to Advanced Platelet-Rich Fibrin: Biological Achievements and Clinical Advances in Modern Surgery. Eur. J. Dent. 2019;13(2):280-286. DOI: 10.1055/s-0039-1696585.
  19.  Crisci A, Manfredi S, Crisci M. Fibrinrich in Leukocyte- Platelets (L-PRF) and Injectable Fibrin Rich Platelets (I-PRF), two opportunity in regenerative surgery: Review of the sciences and literature. IOSR Journal of Dental and Medical Sciences (IOSR-JDMS). 2019;18:66-79.
  20.  Choukroun J, Ghanaati S. Reduction of relative centrifugation force within injectable platelet-rich-fibrin (PRF) concentrates advances patients’ own inflammatory cells, platelets and growth factors: The first introduction to the low speed centrifugation concept. Eur. J. Trauma Emerg. Surg. 2018;44(1):87-95. DOI: 10.1007/s00068-017-0767-9.
  21.  Siawasch SAM, Andrade C, Castro AB, Teughels W, Temmerman A, Quirynen AB. Impact of local and systemic antimicrobials on leuko cyte- and platelet rich fibrin: an in vitro study. Sci Rep. 2022;12:2710. DOI: 10.1038/s41598-022-06473-4.
  22.  Crisci A, Barillaro MC, Lepore G, Cardillo F. L-PRF Membrane (FibrinRich in Platelets and Leukocytes) and Its Derivatives (A-PRF, i- PRF) are Help ful as a Basis of Stem Cells in Regenerative Injury Treatment: Trial Work on the Horse. International Blood Research & Reviews. 2019;3(1):1-4.
  23.  Crisci A, Benincasa G, Crisci M, Crisci F. Leukocyte Platelet-Rich Fibrin (L-PRF), a new biomembrane useful in tissue repair: basic science and literature review. Biointerface Research in Applied Chemistry. 2018;8(5):3635-43.
  24.  De Almeida NCPM, Dos Santos NBM, Completo AMG, De Oliveira FGV. Tensile strength assay comparing the resistance between two different autologous platelet concentrates (leucocyte-platelet rich fibrin versus advanced- plateletrichfibrin): A pilotstudy. Int. J. Implant Dent. 2021;15;7(1):1. DOI: 10.1186/s40729-020-00284-w.
  25.  El Bagdadi K, Kubesch A, Yu X, Al-Maawi S, Orlowska A, Dias A, et al. Reduction of relative centrifugal forces increases growth factor release within solid platelet- rich fibrin (PRF)-based matrices: a proof of concept of LSCC (low speed centrifugation concept). European Journal of Trauma and Emergency Surgery. 2019;45(3):467-79.
  26.  Humeniuk RА. Zasoby dlia optymizatsii osteohenezu v stomatolohii: oblast zastosuvannia, aktualnist problemy i perspektyvy rozrobok i vprovadzhennia novykh preparativ. Kyiv; 2021. 152 s. [in Ukrainian].

Публікація статті:

«Вісник проблем біології і медицини», Випуск 2, 177, 564-576 сторінки, код УДК 616-071+616,314-007+616.716

DOI:

10.29254/2077-4214-2025-2-177-564-576

Чи була ця стаття корисною?

Залишити відповідь

Ваша e-mail адреса не оприлюднюватиметься. Обов’язкові поля позначені *


The reCAPTCHA verification period has expired. Please reload the page.