Ващенюк М. І.

ГІСТОЛОГІЧНІ ЗМІНИ ЯДЕР ГІПОТАЛАМУСА ПРИ ТРИВАЛОМУ ВПЛИВІ ГЛУТАМАТУ НАТРІЮ

---

Показати/Завантажити PDF

Про автора:

Ващенюк М. І.

Рубрика:

МОРФОЛОГІЯ

Тип статті:

Наукова стаття

Анотація:

«Глутамат-індуковане ожиріння» актуальна і цікава тема для обговорення у науковій спільноті в контексті здоров’я та харчування. Глутамат натрію – харчова добавка, яка використовується часто у фаст-фуді, консервах та багатьох продуктах швидкого приготування. Через підвищення апетиту глутаматом, з часом у людей збільшується маса тіла. Цей ефект можна пояснити впливом глутамату на центральну нервову систему, особливо на сірий горб гіпоталамуса, так як останній відповідає за ліпідний обмін. Метою роботи є аналіз структурних змін компонентів ядер сірого горба гіпоталамуса при тривалому впливі глутамату натрію в експерименті. Матеріал дослідження представлений мікропрепаратами сірого горба гіпоталамуса двох груп білих щурів самців лінії Вістар вагою 218-260 г (інтактних та експериментальних). Зафарбовування гістологічних зрізів проводили гематоксиліном та еозином, крезил віолетом, комбінацією крезил віолету та люксолу, а також проводили імпрегнацію сріблом, після чого вивчали особливості мікроскопічної будови компонентів сірого горба гіпоталамуса за умови 10-ти тижневого введення глутамату натрію у порівнянні з інтактними тваринами. Результати дослідження дозволили описати особливості цитоархітектоніки сірого горба, його мікроморфологічну характиристику у контролі та експерименті. Після тривалого введення глутамату натрію в мікроскопічній картині домінують нейрони в стані набряку, спостерігаємо їх поодиноку загибель, фрагменти нейронів фагоцитуються гліальними елементами (нейронофагія). Морфометричний аналіз показав достовірне збільшення об’єму як перикаріону, так і ядра нейронів сірого горба гіпоталамуса. Висновки. Тривале споживання глутамату натрію зумовлює глибокі структурні зміни ядер гіпоталамуса.

Теги:

Список цитованої літератури:

1. Bulyk R, Bulyk T, Smetaniuk O, Vlasova K, Kryvchanska M. Efekty melatoninu na shchilnist melatoninovykh retseptoriv u nadzorovomu yadri hipotalamusa shchuriv za umov stresu. Visnyk problem biolohii i medytsyny. 2021;3(161):2458. DOI: 10.29254/2077421420213161245248. [in Ukrainian].
2. May A, Burstein R. Hypothalamic regulation of headache and migraine. Cephalalgia. 2019;39(13):1710-1719. DOI: 10.1177/0333102419867280.
3. Burfeind KG, Michaelis KA, Marks DL. The central role of hypothalamic inflammation in the acute illness response and cachexia. Semin Cell Dev Biol. 2016;54:42-52. DOI: 10.1016/j.semcdb.2015.10.038.
4. Harapko T, Mateshuk-Vatseba L, Goncharuk-Khomyn M, Bekesevych A, Lytvak Yu. Changes in the Structural Organization of Lymph Nodes and Biochemical Indicators of Blood Due to the Action of Sodium Glutamate. Journal of International Dental andMedical Research. 2020;13(4):1578-84.
5. Konopelniuk V, Prybytko I, Tsyriuk O, Falalieieva T. Pathophysiological characteristics of the experimental model of obesity in female rats caused by neonatal administration of monosodium glutamate. Scientific Journal «ScienceRise: Biological Science». 2016;3(3):14-8.
6. De Farias T, Cruz M, De Sa R, Severi I, Perugini J, Senzacqua M, et al. Melatonin supplementation decreases hypertrophic obesity and inflammation induced by highfat diet in mice. Front Endocrinol, 2019;10:750.
7. Bhandari U. Effect of Embelin in Monosodium Glutamate Induced Obesity in Male Neonatal Wistar Rats. Atheroscler. Suppl. 2018;32:e138. DOI: 10.1016/j.atherosclerosissup.2018.04.423.
8. Krynytska I, Marushchak M, Naumova L, Mazur L. The Toxic Impact of Monosodium Glutamate in Rats. J Med J. 2019;53(2):91-101.
9. Joseph S, Werner H, Stegmüller J. Gallyas silver impregnation of myelinated nerve fibers. Bio Protocol. 2019;9:e3436. DOI: 10.21769/BioProtoc.3436.
10. Pyavchenko G, Shmarkova L, Nozdrin V. Changes in the number of neurons in the rat motor cortex and movement activity with age. Neurosci. Behav. Phys. 2016;46:270-273. DOI: 10.1007/s11055-016-0228-7.
11. George Paxinos, ed. The Rat Nervous System. Third Edition. Academic Press; 2004. 1309 p. DOI: 10.1016/B978-0-12-547638-6.X5000-7.
12. Schröder H, Moser N, Huggenberger S. Neuroanatomy of the Mouse Springer International Publishing; 2019. 350 p. DOI: 10.1007/978-3-030-19898-5.
13. Vashcheniuk M. Peculiaritis of hypothalamic nuclei microstructure of the white rat under the effect of sodium glutamateand its absence. Art of Medicine. 2024;1(29):26-32. DOI: 10.21802/artm.2024.1.29.26.
14. Felsky D, Roostaei T, Nho K, Risacher SL, Bradshaw EM, Petyuk V, et al. Neuropathological correlates and genetic architecture of microglial activation in elderly human brain. Nat Commun. 2019;10(1):409. DOI: 10.1038/s41467-018-08279-3.
15. Hryntsova, NB, Romaniuk AM. Morfometrychni zminy neironiv kory velykykh pivkul holovnoho mozku v umovakh vplyvu na orhanizm solei vazhkykh metaliv. Aktualni pytannia eksperymentalnoi ta klinichnoi medytsyny. 2007;1:68-69. [in Ukrainian].
16. Yannick B, Esther Ngo Lemba T, Albert Donatien A, Christian B, Théophile D. Effects of stem bark aqueous extract of Fagara tessmannii Engl (Rutaceae) on cardiovascular risks related to monosodium glutamate-induced obesity in rat: In vivo and in vitro assessments. Journal of Ethnopharmacology. 2020;260:112972. DOI: 10.1016/j.jep.2020.112972.
17. Harapko T, Mateshuk-Vatseba L. Effects of MSG on the lymph nodes of the albino rat: Ultrastructural and morphometric studies. Eur J Anat. 2021;25(1):75-81.

Публікація статті:

«Вісник проблем біології і медицини», 2024 Випуск 2, 173, 358-367 сторінки, код УДК 611.814.3

DOI:

10.29254/2077-4214-2024-2-173-358-367