Кошарний В. В., Лисаченко О. Д., Филенко Б. М., Ройко Н. В., Коноваленко С. О.

ЖИРОВА ТКАНИНА ВЕЛИКОГО ЧЕПЦЯ: МОРФОЛОГІЯ ТА ФУНКЦІЯ

---

Показати/Завантажити PDF

Про автора:

Кошарний В. В., Лисаченко О. Д., Филенко Б. М., Ройко Н. В., Коноваленко С. О.

Рубрика:

ОГЛЯДИ ЛІТЕРАТУРИ

Тип статті:

Наукова стаття

Анотація:

Великий чепець є одним з органів, що може накопичувати велику кількість жирової тканини. Жирова тканина чепця відіграє ключову роль у місцевій імунній відповіді та містить популяцію мультипотентних мезенхімальних стовбурових клітин. У великому чепці розташовується переважно біла жирова тканина. Білі адипоцити зазвичай мають одну велику ліпідну краплю, яка займає більшу частину клітини, і відносно невелику кількість мітохондрій. Основною функцією білого жиру великого чепця є накопичення та вивільнення енергії у відповідь на зміни рівнів системної енергії. Крім того, біла жирова тканина є важливим ендокринним органом, що виробляє гормони та біологічно активні речовини, які називаються адипокінами та регулюють багато фізіологічних процесів. Мета роботи – узагальнити існуючі наукові дані морфофункціональних особливостей жирової тканини великого чепця та її роль у розвитку ожиріння та цукрового діабету типу 2. Адипокіни відіграють важливу роль у регулюванні метаболізму всього організму, включаючи сприяння чутливості до інсуліну, інсулінорезистентність і запалення. Порушення функції адипокінів, ліпокінів та їх співвідношення відіграє важливу роль у розвитку ожиріння, цукрового діабету 2 типу. Ожиріння та цукровий діабет 2 типу є двома захворюваннями, які в більшості випадків мають спільні метаболічні порушення; однак є й відмінності. Розвитку ожиріння та пов’язаних з ним метаболічних порушень сприяє пластичність жирової тканини. За деякими даними на ріст жирової тканини і зміни метаболічних процесів у ній можуть впливати рівень васкуляризації жирової тканини. Проте, недавні дослідження показують, що у пацієнтів з ожирінням кількість капілярів у тканині вісцерального жиру зменшується порівняно з людьми без ожиріння, а ступінь васкуляризації був майже однаковим незалежно від ступеня ожиріння або зміни метаболічного профілю. Морфологічно у пацієнтів на ожиріння та цукровий діабет типу 2 у вісциральній жировій тканині спостерігається значне збільшення розмірів адипоцитів, але зміни, які виникають у жировій тканині, не є результатом тривалої гіперглікемії, а можуть бути пов’язані з генетичними або епігенетичними факторами пацієнтів. При ожирінні збільшення жирової тканини відбувається за рахунок гіпертрофії і гіперплазії, а це пояснює відносне зменшення кількості судин у жировій тканині.

Теги:

Список цитованої літератури:

1. Corvera S. Cellular heterogeneity in adipose tissues. Annual review of physiology. 2021;83:257-278. DOI: https://doi.org/10.1146/annurevphysiol-031620-095446.
2. Di Nicola V. Omentum a powerful biological source in regenerative surgery. Regenerative therapy. 2019;11:182-191. DOI: https://doi. org/10.1016/j. reth.2019.07.008.
3. Klopp AH, Zhang Y, Solley T, Amaya-Manzanares F, Marini F, Andreeff M, et al. Omental adipose tissue–derived stromal cells promote vascularization and growth of endometrial tumors. Clinical cancer research. 2012;18(3):771-782. DOI: https://doi.org/10.1158/1078-0432. CCR-11-1916.
4. Maksymenko OS. Strukturna organizatsiya sudynno-zhyrovykh arkad velykogo cheptsya bilykh shchuriv. Morphologia. 2022;16(3):61-68. DOI: https://doi.org/10.26641/1997-9665.2022.3.61-68. [in Ukrainian].
5. Sakers A, De Siqueira MK, Seale P, Villanueva CJ. Adipose-tissue plasticity in health and disease. Cell. 2022;185(3):419-446. DOI: https:// doi.org/ 10.1016/j.cell.2021.12.016.
6. Konovalenko SO, Fylenko BM, Royko NV, Kosharnyy VV. Morfofunktsionalni osoblyvosti velykogo cheptsya, yak organu imunogenezu ta regeneratsiyi. Perspektyvy ta innovatsiyi nauky (Seriya «Pedagogika», Seriya «Psykhologiya», Seriya «Medytsyna»). 2023;12(30):949- 959. DOI: https://doi.org/10.52058/2786-4952-2023-12(30)-949-959. [in Ukrainian].
7. Stepanchuk AP, Fedorchenko IL, Tarasenko YaA, Tykhonova OO, Fylenko BM. Gistostruktura velykogo cheptsya lyudyny v normi i perytoniti. Ukrayinskyy zhurnal medytsyny, biologiyi ta sportu. 2021;5(33):127-133. DOI: https://doi.org/10.26693/jmbs06.05.127. [in Ukrainian].
8. Maslova NA, Ovchynnykova TV. Prostranstvennaya oryentatsyya prekapyllyarnykh arteryol v malom salnyke cheloveka. Morfologyya. 2018;153(3):180.
9. Chusyd DE, Wang D, Huffman DM, Nagy TR. Relationships between rodent white adipose fat pads and human white adipose fat depots. Front. Nutr. 2016;3:10. DOI: https://doi.org/10.3389/fnut.2016.00010.
10. Funcke JB, Scherer PE. Beyond adiponectin and leptin: adipose tissue-derived mediators of inter-organ communication. J. Lipid Res. 2019;60:1648-1684. DOI: https://doi.org/10.1194/jlr.R094060.
11. Shevlyuk NN, Khalykova LV, Khalykov AA. Morfofunktsyonalnaya kharakterystyka bolshogo salnyka. Zhurnal anatomyy y gystopatologyy. 2020;9(2):90-99. DOI: https://doi.org/10.18499/2225-7357-2020-9-2-90-99.
12. Romantsova TY. Zhyrovaya tkan: tsveta, depo y funktsyy. Ozhyrenye y metabolizm. 2021;18(3):282-301. DOI: https://doi.org/10.14341/ omet12748.
13. Newell-Fugate AE. The role of sex steroids in white adipose tissue adipocyte function. Reproduction. 2017;153(4):R133-R149. DOI: https://doi.org/10.1530/REP-16-0417.
14. Yuxin L, Chen L, Xiaoxia L, Yue L, Junjie L, Youzhu L, et al. Research progress on the relationship between obesity-inflammation-aromatase axis and male infertility. Oxidative Medicine and Cellular Longevity. 2021;2021:6612796. DOI: https://doi.org/10.1155/2021/6612796.
15. Schiffer L, Arlt W, O’Reilly MW. Understanding the role of androgen action in female adipose tissue. Hyperandrogenism in women. 2019;53:33-49. DOI: https://doi.org/10.1159/000494901/.
16. Funcke JB, Scherer PE. Beyond adiponectin and leptin: adipose tissue-derived mediators of inter-organ communication. Journal of lipid research. 2019;60(10):1648-1697. DOI: https://doi.org/10.1194/jlr.R094060.
17. Myers MG, Leibel RL, Seeley RJ, Schwartz MW. Obesity and leptin resistance: distinguishing cause from effect. Trends Endocrinol Metab. 2010;21:643-51. DOI: 10.1016/j.tem.2010.08.002.
18. Flier JS, Maratos-Flier E. Leptin’s physiologic role: does the emperor of energy balance have no clothes? Cell Metab. 2017;26:24-26. DOI: https://doi.org/10.1016/j.cmet.2017.05.013.
19. Choe SS, Huh JY, Hwang IJ, Kim JI, Kim JB. Adipose tissue remodeling: its role in energy metabolism and metabolic disorders. Frontiers in endocrinology. 2016;7:30. DOI: https://doi.org/10.3389/fendo.2016.00030.
20. Straub LG, Scherer PE. Metabolic messengers: adiponectin. Nature Metabolism. 2019 Mar;1(3):334-9.
21. Wang ZV, Scherer PE. Adiponectin, the past two decades. Journal of molecular cell biology. 2016 Apr 1;8(2):93-100. DOI: https://doi.org/ 10.1093/jmcb/mjw011.
22. Lara-Castro C, Luo NL, Wallace P, Klein RL, Garvey WT. Adiponectin multimeric complexes and the metabolic syndrome trait cluster. Diabetes. 2006;55:249-59. DOI: 10.2337/diabetes.55.01.06.db05-1105.
23. Estienne A, Bongrani A, Reverchon M, Ramé C, Ducluzeau PH, Froment P, Dupont J. Involvement of novel adipokines, chemerin, visfatin, resistin and apelin in reproductive functions in normal and pathological conditions in humans and animal models. International journal of molecular sciences. 2019;20(18):4431. DOI: https://doi.org/10.3390/ijms20184431.
24. de Souza Batista CM, Yang RZ, Lee MJ, Glynn NM, Yu DZ, Pray J, et al. Omentin plasma levels and gene expression are decreased in obesity. Diabetes. 2007;56:1655-61. DOI: 10.2337/db06-1506.
25. Fu X, Wang Y, Zhao F, Cui R, Xie W, Liu Q, et al. Shared biological mechanisms of depression and obesity: focus on adipokines and lipokines. Aging (Albany NY). 2023;15(12):5917.
26. Molina-Ayala MA, Rodríguez-Amador V, Suárez-Sánchez R, León-Solís L, Gómez-Zamudio J, Mendoza-Zubieta V, et al. Expression of obesity-and type-2 diabetes-associated genes in omental adipose tissue of individuals with obesity. Gene. 2022;815:146181. DOI: https:// doi.org/10.1016/j. gene.2021.146181.
27. Berry R, Jeffery E, Rodeheffer MS. Weighing in on adipocyte precursors. Cell Metab. 2014;19(1):8-20. DOI: http://dx.doi.org/10.1016/j. cmet.2013. 10.003.
28. Sung HK, Doh K-O, Son JE, Park JG, Bae Y, Choi S, et al. Adipose Vascular Endothelial Growth Factor Regulates Metabolic Homeostasis through Angiogenesis. Cell Metab. 2013;17(1):61-72. DOI: http://dx.doi.org/10.1016/j.cmet.2012.12.010.
29. Hodson L, Humphreys SM, Karpe F, Frayn KN. Metabolic Signatures of Human Adipose Tissue Hypoxia in Obesity. Diabetes. 2013;62(5):1417-25. DOI: https://doi.org/10.2337/db12-1032.
30. Belligoli A, Compagnin C, Sanna M, Favaretto F, Fabris R, Busetto L, et al. Characterization of subcutaneous and omental adipose tissue in patients with obesity and with different degrees of glucose impairment. Sci Rep. 2019;9:11333. DOI: https://doi.org/10.1038/s41598- 019-47719-y.
31. Crewe C, An YA, Scherer PE. The ominous triad of adipose tissue dysfunction: inflammation, fibrosis, and impaired angiogenesis. J Clin Invest. 2017;127(1):74-82. DOI: https://doi.org/10.1172/JCI88883.
32. Goossens GH, Blaak EE. Adipose tissue oxygen tension: implications for chronic metabolic and inflammatory diseases. Curr Opin Clin Nutr Metab Care. 2012;15(6):539-46. DOI: https://doi.org/10.1097/MCO.0b013e 328358fa87.
33. Muir LA, Neeley CK, Meyer KA, Baker NA, Brosius AM, Washabaugh AR, et al. Adipose tissue fibrosis, hypertrophy, and hyperplasia: Correlations with diabetes in human obesity. Obesity (Silver Spring). 2016;24(3):597-605. DOI: https://doi.org/10.1002/oby.21377.

Публікація статті:

«Вісник проблем біології і медицини», 2023 Випуск 3, 170, 52-56 сторінки, код УДК 616.382:616.53

DOI:

10.29254/2077-4214-2023-3-170-52-56