Стецук Є. В., Шепітько В. І., Білаш С. М., Борута Н. В., Вільхова О. В., Лисаченко О. Д., Волошина О. В.

ДИНАМІКА КІЛЬКОСТІ CD 163+ КЛІТИН МОНОЦИТАРНО-МАКРОФАГАЛЬНОГО РЯДУ ІНТЕРСТИЦІЮ СІМ’ЯНИКІВ ЩУРІВ ПРИ ВВЕДЕННІ ТРИПТОРЕЛІНУ З ДОДАВАННЯМ КВЕРЦЕТИНУ ПРОТЯГОМ 1 РОКУ

---

Показати/Завантажити PDF

Про автора:

Стецук Є. В., Шепітько В. І., Білаш С. М., Борута Н. В., Вільхова О. В., Лисаченко О. Д., Волошина О. В.

Рубрика:

МОРФОЛОГІЯ

Тип статті:

Наукова стаття

Анотація:

У статті розглядається зміна кількісного показника клітин моноцитарно-макрофагального ряду сполучної тканини яєчка за рецепторами СD163+ при хімічній кастрації триптореліном протягом 1 року спостереження з додаванням кверцетину. В нашому спостереженні ми детально простежили, як змінюється популяція специфічних CD 163+ макрофагів в інтерстиції сімяника в умовах хімічної кастрації триптореліном. Ці дані допомагають краще зрозуміти, як саме імунна система органа реагує на глибокі гормональні зміни. На підставі проведеного морфометричного та імуногістохімічного аналізу встановлено, що тривале введення триптореліну спричиняє хронічну імунозапальну перебудову яєчка. Акумуляція CD163+ макрофагів є ключовим ланцюгом у механізмі заміщення функціональної тканини органа сполучною, що призводить до незворотного зниження репродуктивного потенціалу в експериментальній моделі. Введення триптореліну з додавання в раціон харчування експериментальних щурів кверцетину призводить до стабільного, прогресуючого збільшення популяції CD163+ макрофагів у сполучній тканині яєчка протягом усього річного циклу. Динаміка має нелінійний характер із прискоренням у період між 3-м та 6-м місяцями (90-180 доби). Сумарне збільшення показника на 365-ту добу складає 213,41% відносно вихідного рівня.

Теги:

Список цитованої літератури:

1. Wang M, Yang Y, Cansever D, Wang Y, Kantores C, Messiaen S, et al. Two populations of self-maintaining monocyte-independent macrophages exist in adult epididymis and testis. 2021;118(1):e2013686117. DOI: 10.1073/pnas. 2013686117.
2. Mossadegh-Keller N, Sieweke MH. Testicular macrophages: Guardians of fertility. Cell Immunol. 2018;330:120-125. DOI: 10.1016/j. cellimm.2018. 03.009.
3. Likhachov VK, Vashchenko VL, Taranovska OO. Impact of preventive therapy on regulating mechanisms of decidual macrophage polarization in pregnant women with high risk of preeclamplsia. Wiad Lek. 2021;74(9 cz 1):2123-2127.
4. Tkachenkо IM, Dmytrenko MI, Cholovskyi MО, Korovina LD, Mamontova TV. Impregnation of oral mucosa over impacted teeth by subpopulations of macrophages M1 and M2. Wiad Lek. 2021;74(6):1451-1456.
5. Yemchenko YaO, Shynkevych VI, Ishcheikin KE, Kaidashev IP. PPAR-Gamma Agonist Pioglitazone Reduced CD68+ but Not CD163+ Macrophage Dermal Infiltration in Obese Psoriatic Patients. PP AR Res. 2020;2020:4548012.
6. Zelinka-Khobzey MM, Tarasenko KV, Mamontova TV, Shlykova OA. Characteristics of CD68+ and CD163+ expression in placenta of women with preeclampsia and obesity. Wiad Lek. 2021;74(9 cz 1):2152-2158.
7. Balgetir MK, Tektemur NK, Tektemur A, Türk G, Güngör İH, Cihangiroglu AC, et al. Determination of M1/M2 Macrophage Polarization in Ipsilateral and Contralateral Rat Testis Tissue Following Unilateral Torsion/Detorsion. Reprod Sci. 2024;31(7):2092-2102. DOI: 10.1007/ s43032-024-01519-6.
8. Tsai SJ, Li LH, Chen WJ, Huang EY, Huang CY, Brannigan RE, et al Prediction of microdissection testicular sperm extraction outcomes of azoospermic patients post-chemotherapy using cyclophosphamide equivalent dose. J Assist Reprod Genet. 2023;40(8):2013-2020. DOI: 10.1007/s10815-023-02870-4.
9. Garza S, Chen L, Galano M, Cheung G, Sottas C, Li L, et al. Mitochondrial dynamics, Leydig cell function, and age-related testosterone deficiency. FASEB J. 2022;36(12):e22637. DOI: 10.1096/fj.202201026R.
10. Li S, Liu L, Luo G, Yuan Y, Hu D, Xiao F. The crosstalk between M1 macrophage polarization and energy metabolism disorder contributes to polystyrene nanoplastics-triggered testicular inflammation. Food Chem Toxicol. 2023;180:114002. DOI: 10.1016/j.fct.2023.114002.
11. Botté MC, Lerrant Y, Lozach A, Bérault A, Counis R, Kottler ML. LH down-regulates gonadotropin-releasing hormone (GnRH) receptor, but not GnRH, mRNA levels in the rat testis. J Endocrinol. 1999;162(3):409-415. DOI: 10.1677/joe.0.1620409.
12. Stetsuk YeV, Akimov OYe, Shepitko KV, Goltsev AN. Role of nitric oxide in development of fibrotic changes in rats’ testes after 270 day central deprivation of testosterone synthesis. World of medicine and biology. 2020;73(3): 211-215. DOI: 10.26724/2079-8334-2020-3-73 211-215.
13. Bahriy MM, Dibrova VA, Popadynets OH, Hryshchuk MI. Metodyky morfolohichnykh doslidzhen. Vinnytsya: Nova knyha; 2016. 328 s. [in Ukrainian].
14. Chung JY, Brown S, Chen H, Liu J, Papadopoulos V, Zirkin B. Effects of pharmacologically induced Leydig cell testosterone production on intratesticular testosterone and spermatogenesis. Biol Reprod. 2020;102(2):489-498. DOI: 10.1093/biolre/ioz174.
15. Hotta Y, Kataoka T, Kimura K. Testosterone Deficiency and Endothelial Dysfunction: Nitric Oxide, Asymmetric Dimethylarginine, and Endothelial Progenitor Cells. Sex Med Rev. 2019;7(4):661-668. DOI: 10.1016/j.sxmr. 2019.02.005.
16. Zheng W, Zhang S, Jiang S, Huang Z, Chen X, Guo H, et al. Evaluation of immune status in testis and macrophage polarization associated with testicular damage in patients with nonobstructive azoospermia. Am J Reprod Immunol. 2021;86(5):e13481. DOI: 10.1111/aji.13481.

Публікація статті:

«Вісник проблем біології і медицини», 2026 Випуск 1, 180, 451-459 сторінки, код УДК 616.63:477 + 175.67:599.433/544.65

DOI:

10.29254/2077-4214-2026-1-180-451-459