Полив’яна О. А., Стецук Є. В., Шепітько В. І., Борута Н. В., Вілхова О. В., Пелипенко Л. Б., Лисаченко О. Д.
ДИНАМІКА ІНДЕКСУ ЯДЕРНОСТІ ТА КІЛЬКОСТІ МІТОЗІВ В ГЕПАТОЦИТАХ ЗА УМОВ ЦЕНТРАЛЬНОЇ БЛОКАДИ СИНТЕЗУ ЛЮТЕЇНІЗУЮЧОГО ГОРМОНУ З ДОДАВАННЯМ КВЕРЦЕТИНУ
Показати/Завантажити PDF
Про автора:
Полив’яна О. А., Стецук Є. В., Шепітько В. І., Борута Н. В., Вілхова О. В., Пелипенко Л. Б., Лисаченко О. Д.
Рубрика:
МОРФОЛОГІЯ
Тип статті:
Наукова стаття
Анотація:
Порушення мітотичної активності гепатоцитів можуть бути зумовлені впливом токсичних речовин, вірусних інфекцій, генетичних мутацій, оксидативного стресу та дефіцитом поживних елементів. Дисфункція мітозів спричиняє розвиток тяжких патологічних станів, таких як гепатоцелюлярна карцинома, фіброз, цироз і печінкова недостатність. Геномна нестабільність здатна знижувати регенеративний потенціал печінки, що негативно впливає на її функціональну активність. Метою дослідження було визначення змін у динаміці плоїдного індексу, ядерного індексу та частоти мітозів у різних підтипах гепатоцитів за умов центрального блокування синтезу лютеїнізуючого гормону при тривалій дії триптореліну з додаванням кверцетину до раціону тварин. Дослідження проведено на 60 статевозрілих білих щурах-самцях масою 140-160 г. Об’єктом аналізу були тканини печінки. Тварин розподілили на три групи. Контрольна група (1 група) отримувала фізіологічний розчин (10 тварин). Другій групі підшкірно вводили диферелін (триптореліну ембонат) у дозі 0,3 мг діючої речовини на 1 кг маси тіла, причому препарат мав активність протягом 365 днів (25 тварин). Третій групі було введено трипторелін у тій самій дозі (0,3 мг/кг маси тіла) у поєднанні з кверцетином, який додавали до раціону через гастральний зонд тричі на тиждень (25 тварин). Забір матеріалу здійснювали через 1, 3, 6, 9 та 12 місяців, а тварин виводили з експерименту шляхом передозування ефірного наркозу. Було встановлено, що тривале центральне пригнічення синтезу лютеїнізуючого гормону за допомогою триптореліну викликає окисне пошкодження паренхіми печінки. Відповідь печінкової паренхіми характеризувалася підвищенням плоїдного індексу, ядерного індексу та кількості мітозів у гепатоцитах на пізніх етапах дослідження. Кверцетин сприяє зниженню інтенсивності оксидативного стресу в печінці, позитивно впливаючи на його перебіг.
Теги:
Список цитованої літератури:
- Devarbhavi H, Asrani SK, Arab JP, Nartey YA, Pose E, Kamath PS. Global burden of liver disease: 2023 update. J Hepatol. 2023;79(2):516- 537. DOI: 10.1016/j.jhep.2023.03.017.
- Neshat SY, Quiroz VM, Wang Y, Tamayo S, Doloff JC. Liver Disease: Induction, Progression, Immunological Mechanisms, and Therapeutic Interventions. Int J Mol Sci. 2021;22(13):6777. DOI: 10.3390/ijms22136777.
- Rikalo NA. The mechanisms of reparative regeneration of liver tissue in immature rats at chronic toxic hepatitis. Journal of Education, Health and Sport. 2015;5(9):587-598. DOI: 10.5281/zenodo.31627.
- Rikalo NA, Beregovenko YM. Research of cell cycle phases and nuclear DNA ploidy in immature liver cells of rats with chronic toxic hepatitis and lisinopril correction. Journal of Education, Health and Sport. 2016;6(1):219-228. DOI: http://dx.doi.org/10.5281/zenodo.45343.
- Vimalesvaran S, Samyn M, Dhawan A. Liver disease in adolescents. Arch Dis Child. 2023;108(6):427-432. DOI: 10.1136/archdischild-2021-323647.
- Donne R, Saroul-Aïnama M, Cordier P, Celton-Morizur S, Desdouets C. Polyploidy in liver development, homeostasis and disease. Nat Rev Gastroenterol Hepatol. 2020;17(7):391-405. DOI: 10.1038/s41575-020-0284-x.
- Hsu SH, Duncan AW. Pathological polyploidy in liver disease. Hepatology. 2015;62(3):968-70. DOI: 10.1002/hep.27908.
- Hajam YA, Rani R, Ganie SY, Sheikh TA, Javaid D, Qadri SS, et al. Oxidative stress in human pathology and aging: molecular mechanisms and perspectives. Cells. 2022;11(3):552. DOI: 10.3390/cells11030552.
- Sharifi-Rad M, Anil Kumar NV, Zucca P, Varoni EM, Dini L, Panzarini E, et al. Oxidative stress, and antioxidants: back and forth in the pathophysiology of chronic diseases. Front Physiol. 2020;11:694. DOI: 10.3389/fphys.2020. 00694.
- Sies H. Oxidative stress: concept and some practical aspects. Antioxidants (Basel). 2020;9(9):852. DOI: 10.3390/antiox9090852.
- Abdelzaher WY, Abdel-Hafez SMN, Rofaeil RR, Ali AHSA, Hegazy A, Bahaa HA. The protective effect of fenofibrate, triptorelin, and their combination against premature ovarian failure in rats. Naunyn Schmiedebergs Arch Pharmacol. 2021;394(1):137-149. DOI: 10.1007/ s00210-020-01975-2.
- Gur S, Alzweri L, Yilmaz-Oral D, Kaya-Sezginer E, AbdelMageed AB, Dick B, et al. Testosterone positively regulates functional responses and nitric oxide expression in the isolated human corpus cavernosum. Andrology. 2020;8(6):1824-1833. DOI: 10.1111/andr.12866.
- Komura K, Sweeney CJ, Inamoto T, Ibuki N, Azuma H, Kantoff PW. Current treatment strategies for advanced prostate cancer. Int J Urol. 2018;25(3):220-231. DOI: 10.1111/iju.13512.
- Zhang Y, Zhang C, Li Z, Zeng C, Xue Z, Li E, et al. New 8-prenylated quercetin glycosides from the flowers of Epimedium acuminatum and their testosterone production-promoting activities. Front Chem. 2022;10:1014110. DOI: 10.3389/fchem.2022.1014110.
- Stetsuk YeV, Akimov OYe, Shepitko KV, Goltsev AN. Role of nitric oxide in development of fibrotic changes in rats’ testes after 270 day central deprivation of testosterone synthesis. World of Medicine and Biology. 2020;73(3): 211-215. DOI: 10.26724/2079-8334-2020-3-73- 211-215.
- Chekalina NI, Shut SV, Trybrat TA, Burmak YH, Petrov YY, Manusha YI, et al. Effect of quercetin on parameters of central hemodynamics and myocardial ischemia in patients with stable coronary heart disease. Wiad Lek. 2017;70(4):707-11.
- Kostenko V, Akimov O, Gutnik O, Nazarenko S, Taran O. Modulation of redox-sensitive transcription factors with polyphenols as pathogenetically grounded approach in therapy of systemic inflammatory response Heliyon, 2023;9(5):e15551 DOI: 10.1016/j.heliyon.2023. e15551.
- Amevor FK, Cui Z, Ning Z, Shu G, Du X, Jin N, et al. Dietary quercetin and vitamin E supplementation modulates the reproductive performance and antioxidant capacity of aged male breeder chickens. Poult Sci. 2022;101(6):101851. DOI: 10.1016/j.psj.2022.101851.
- Botté MC, Lerrant Y, Lozach A, Bérault A, Counis R, Kottler ML. LH down-regulates gonadotropin-releasing hormone (GnRH) receptor, but not GnRH, mRNA levels in the rat testis. J Endocrinol. 1999;162(3):409-415. DOI: 10.1677/joe.0.1620409.
- Bahriy MM, Dibrova VA, Popadynets OH, Hryshchuk MI. Metodyky morfolohichnykh doslidzhen. Vinnytsya: Nova knyha; 2016. 328 s. [in Ukrainian].
- Gentric G, Desdouets C. Liver polyploidy: Dr Jekyll or Mr Hide? Oncotarget. 2015;6(11):8430-1. DOI: 10.18632/oncotarget.3809.
- Klaunig JE. Oxidative stress and cancer. Curr Pharm Des. 2018;24(40):4771-8. DOI: 10.2174/1381612825666190215121712.
- Donne R, Sangouard F, Celton-Morizur S, Desdouets C. Hepatocyte Polyploidy: Driver or Gatekeeper of Chronic Liver Diseases. Cancers (Basel). 2021;13(20):5151. DOI: 10.3390/cancers13205151.
- Polyvyana OA, Shepitko KV, Stetsuk YeV, Akimov OYe, Dubinin DS. Influence of prolonged tripterelininduced central deprivation of testosterone synthesis on morphological structure of rat’s liver. World of Medicine and Biology. 2021;1(75):205-209. DOI: 10.26724/2079-8334- 2021-1-75-205-209.
- Kasarinaite A, Sinton M, Saunders PTK, Hay DC. The Influence of Sex Hormones in Liver Function and Disease. Cells. 2023;12(12):1604. DOI: 10.3390/cells12121604.
- Matsumoto T. Implications of Polyploidy and Ploidy Alterations in Hepatocytes in Liver Injuries and Cancers. Int J Mol Sci. 2022;23(16):9409. DOI: 10.3390/ijms23169409.
- Gupta S. Hepatic polyploidy and liver growth control. Semin Cancer Biol. 2000;10(3):161-71. DOI: 10.1006/scbi.2000.0317.
- Zhang S, Lin YH, Tarlow B, Zhu H. The origins and functions of hepatic polyploidy. Cell Cycle. 2019;18(12):1302-1315. DOI: 10.1080/15384101. 2019.1618123.
Публікація статті:
«Вісник проблем біології і медицини», 2025 Випуск 1, 176, 452-460 сторінки, код УДК 611.36-018.1-06:615.357:577.175.6+615.322/.356-122.3