Божик С. С., Гасюк Н. В., Радчук В. Б.

АНАЛІЗ ВПЛИВУ ПРОЦЕДУРИ ВІДБІЛЮВАННЯ ЗУБІВ НА ЯСНА ТА ЦИТОКІНОВИЙ ПРОФІЛЬ РОТОВОЇ РІДИНИ (ОГЛЯД ЛІТЕРАТУРИ)

---

Показати/Завантажити PDF

Про автора:

Божик С. С., Гасюк Н. В., Радчук В. Б.

Рубрика:

ОГЛЯДИ ЛІТЕРАТУРИ

Тип статті:

Наукова стаття

Анотація:

Здорова та білосніжна усмішка є невід’ємною складовою соціальних взаємин в умовах сучасності. Процедура відбілювання зубів є однією із провідних серед надаваного спектру стоматологічних послуг. Вибір найбільш ефективного методу відбілювання зубів обумовлений природою дисколориту. Хоча відомо про загалом позитивні результати щодо відбілюючої здатності засобів для домашнього відбілювання та відбілювання в клінічних умовах, все ще залишаються сумніви щодо їх впливу на тканини пародонту. У зв’язку з цим потребує подальшого вивчення питання механізму впливу відбілюючих компонентів на стан тканин пародонту та стоматологічного здоров’я загалом. Мета. Характеристика реакції тканин порожнини рота на процедуру відбілювання зубів за результатами аналізу медичної наукової літератури на основі баз даних Scopus, Web of Science, MedLine, PubMed, NCBI за останні 10 років. Основна частина. Результат відбілювання залежить від мінімізації ускладнень у ротовій порожнині після процедури відбілювання та клінічно прогнозованого результату. Основним побічним ефектом процедури вітального відбілювання є гіперестезія зубів. Тривале використання капи при домашньому відбілюванні може спровокувати рецесію за рахунок травми маргінальних ясен. У пацієнтів з рецесією ясен або некаріозними дефектами в пришийковій ділянці відбілюючий агент може пенетрувати дентинними канальцями і викликати некроз пульпи. У дослідженнях, які оцінювали вплив пероксиду карбаміду на ясенні структури зазначено, що пероксид карбаміду викликає посилення проліферативної активності в базальному та парабазальному шарах епітелію ясен, що призводить до зміни морфології тканини. Вагоме значення в оцінці стану тканин пародонту мають клінічні показники, зокрема ясенної рідини, будучи найбільш чутливим методом оцінки запалення ясен. Таким досліджуваним показником є цитокіни, які регулюють місцеву та системну, імунну та запальну відповідь. Інтерлейкін-1 бета (IL-1β) є прозапальним багатофункціональним цитокіном, бере участь у імунній відповіді, присутній і підвищений у тканинах і ясенній рідині при захворюваннях пародонту. Інтерлейкін-10 (IL-10) – протизапальний, секретується Т-лімфоцитами, моноцитами, кератиноцитами та активованими В-клітинами та може виявляти регуляторний вплив на макрофаги, нейтрофіли, природні клітини-кілери, В-клітини та тучні клітини. Секреція IL-1, IL-6, TNFa та IL-8 блокується IL-10, який може водночас регулювати гуморальну імунну відповідь, пригнічуючи функції Т-клітин і стимулюючи диференціацію В-клітин. За типового перебігу запального процесу у пародонті загальна кількість IL-1β у ясенній рідині підвищується. В подальшому їх титр знижується за рахунок активації IL-10. В ході даного дослідження виявлено, що загальна кількість рівнів IL-1β значно підвищується при відбілюванні в клінічних умовах. Результати дослідження не показали суттєвої різниці в рівнях IL-10 до та після процедури відбілювання, що вказує на відсутність будь-якої протизапальної відповіді на застосування різних систем відбілювання. Висновки. Відбілювання із світловою активацією негативно впливає на здоров’я ясен, про що свідчать зміни співвідношення протизапальних і прозапальних цитокінів в бік переважання рівня прозапального цитокіну IL-1β без будь-яких змін у рівнях протизапального IL-10.

Теги:

Список цитованої літератури:

1. Elnawawy MSA, Gharote H, Pullishery F, Al Wakeb R, Abuzenada B. Effect of Various Vital Bleaching Systems on Clinical Outcomes and Patient Satisfaction. Cureus. 2024;16(7):e65648. DOI: 10.7759/cureus.65648.
2. Knezović D, Zlatarić D, Illeš IŽ, Alajbeg M, Žagar. In Vivo Evaluations of Inter-Observer Reliability Using VITA Easyshade® Advance 4.0 Dental Shade-Matching Device. Acta Stomatol Croat. 2016;50(1):34-39. DOI: 10.15644/asc50/1/5.
3. Rodríguez-Martínez J, Valiente M, Sánchez-Martín MJ. Tooth whitening: From the established treatments to novel approaches to prevent side effects. J Esthet Restor Dent. 2019;31(5):431-440. DOI: 10.1111/jerd.12519.
4. Rode SM, Sato TDP, Matos FS, Correia AMO, Camargo SEA. Toxicity and effect of whitening toothpastes on enamel surface. Braz Oral Res. 2021;35:e025. DOI: 10.1590/1807-3107bor-2021.vol35.0025.
5. Mounika A, Mandava J, Roopesh B, Karri G. Clinical evaluation of color change and tooth sensitivity with in-office and home bleaching treatments. Indian J Dent Res. 2018;29(4):423-427. DOI: 10.4103/ijdr.IJDR_688_16.
6. Blanchard D, van Wissen K. Home-based chemically induced whitening (bleaching) of teeth in adults: A summary of a systematic review. Public Health Nurs. 2020;37(4):626-627. DOI: 10.1111/phn.12713.
7. Kahler B. Present status and future directions - Managing discoloured teeth. Int Endod J. 2022;55(4):922-950. DOI: 10.1111/iej.13711.
8. de Oliveira MN, Vidigal MTC, Vieira W, Lins-Candeiro CL, Oliveira LM, Nascimento GG, et al. Assessment of color changes and adverse effects of over-the-counter bleaching protocols: a systematic review and network meta-analysis. Clin Oral Investig. 2024;28(3):189. DOI: 10.1007/s00784-024-05595-5.
9. Majeed A, Farooq I, Grobler SR, Rossouw RJ. Tooth-Bleaching: A Review of the Efficacy and Adverse Effects of Various Tooth Whitening Products. J Coll Physicians Surg Pak. 2015;25(12):891-896.
10. de Moraes IQ, Silva LN, Porto IC, de Lima Neto CF, Dos Santos NB, Fragoso LS. Effect of in-office bleaching with 35% hydrogen peroxide with and without addition of calcium on the enamel surface. Microsc Res Tech. 2015;78(11):975-981. DOI: 10.1002/jemt.22561.
11. Lima AF, Marques MR, Soares DG, Hebling J, Marchi GM, de Souza Costa CA. Antioxidant therapy enhances pulpal healing in bleached teeth. Restor Dent Endod. 2016;41(1):44-54. DOI: 10.5395/rde.2016.41.1.44.
12. Cintra LT, Benetti F, Ferreira LL, Rahal V, Ervolino E, Jacinto RdeC, et al. Evaluation of an experimental rat model for comparative studies of bleaching agents. J Appl Oral Sci. 2016;24(1):95-104. DOI: 10.1590/1678-775720150393.
13. Benetti F, Gomes-Filho JE, Ferreira LL, Ervolino E, Briso ALF, Sivieri-Araújo G, et al. Hydrogen peroxide induces cell proliferation and apoptosis in pulp of rats after dental bleaching in vivo: Effects of the dental bleaching in pulp. Arch Oral Biol. 2017;81:103-109. DOI: 10.1016/j.archoralbio. 2017.04.013.
14. Lima SNL, Ribeiro IS, Grisotto MA, Fernandes ES, Hass V, de Jesus Tavarez RR, et al. Evaluation of several clinical parameters after bleaching with hydrogen peroxide at different concentrations: A randomized clinical trial. J Dent. 2018;68:91-97. DOI: 10.1016/j. jdent.2017.11.008.
15. Leite FRM, Nascimento GG, Møller HJ, Belibasakis GN, Bostanci N, Smith PC, et al. Cytokine profiles and the dynamic of gingivitis development in humans. J Clin Periodontol. 2022;49(1):67-75. DOI: 10.1111/jcpe.13565.
16. Reis CLB, Barbosa MCF, Machado BMSM, Baratto SSP, de Lima DC, Paza AO, et al. Genetic polymorphisms in interleukin-6 and interleukin1-beta were associated with dental caries and gingivitis. Acta Odontol Scand. 2021;79(2):96-102. DOI: 10.1080/00016357.2020.1788722.
17. Motyl S, Manfredini D, Oruba Z, Bugajska J, Sztefko K, Stós W, et al. Evaluation of interleukin-1 beta and the ratio of interleukin-1 beta to interleukin-1 receptor antagonist in gingival crevicular fluid during orthodontic canine retraction. Dent Med Probl. 2021;58(1):47-54. DOI: 10.17219/dmp/132954.
18. Gürsel M, Bayat T, Dündar N, Yabacı Tak A, Karaduman B. Investigating the diagnostic potential of IL-1β, IL-10, and IL-36γ in gingival crevicular fluid in patients with different periodontal conditions. Biomarkers. 2024;29(3):118-126. DOI: 10.1080/1354750X.2024.2318256.
19. Zhang H, Zhang Y, Chen X, Li J, Zhang Z, Yu H. Effects of statins on cytokines levels in gingival crevicular fluid and saliva and on clinical periodontal parameters of middle-aged and elderly patients with type 2 diabetes mellitus. PLoS One. 2021;16(1):e0244806. DOI: 10.1371/ journal.pone.0244806.
20. Firat E, Ercan E, Gurgan S, Yucel OO, Cakir FY, Berker E. The effect of bleachıng systems on the gingiva and the levels of IL-1β and IL-10 in gingival crevicular fluid. Oper Dent. 2011;36(6):572-580. DOI: 10.2341/10-058-C.
21. Javed F, Ahmed HB, Mikami T, Almas K, Romanos GE, Al-Hezaimi K. Cytokine profile in the gingival crevicular fluid of rheumatoid arthritis patients with chronic periodontitis. J Investig Clin Dent. 2014;5(1):1-8. DOI: 10.1111/jicd.12066.
22. Sumbayak IA, Masulili SLC, Tadjoedin FM, Sulijaya B, Mutiara A, Khoirowati D, et al. Changes in Interleukin-1β, Tumor Necrosis Factor-α, and Interleukin-10 Cytokines in Older People with Periodontitis. Geriatrics (Basel). 2023;8(4):79. DOI: 10.3390/geriatrics8040079.
23. Nunez N, Erdogan O, Casey SM, Hernandez R, Tan S, Gibbs JL. Elevated Cytokine Levels in Gingival Crevicular Fluid of Teeth with Apical Periodontitis. J Endod. 2023;49(6):657-663. DOI: 10.1016/j.joen.2023. 03.010.
24. Caldeira FID, Hidalgo MAR, De Carli Dias ML, Scarel-Caminaga RM, Pigossi SC. Systematic review of ratios between disease /health periodontitis modulators and meta-analysis of their levels in gingival tissue and biological fluids. Arch Oral Biol. 2021;127:105147. DOI: 10.1016/j.archoralbio. 2021.105147.
25. Luo H, Fang S, Liu Q, Dang W, Wang Y. Comparison of interleukin expression in gingival crevicular fluid between patients with invisible orthodontics treat-ment and fixed orthodontics treatment. Hua Xi Kou Qiang Yi Xue Za Zhi. 2022;40(3):293-296. DOI: 10.7518/ hxkq.2022.03.007.
26. Bersezio C, Estay J, Sáez M, Sánchez F, Vernal R, Fernández E. Six-month Follow-up of the Effect of Nonvital Bleaching on IL-1β and RANK-L: A Randomized Clinical Trial. Oper Dent. 2019;44(6):581-588. DOI: 10.2341/18-023-C.

Публікація статті:

«Вісник проблем біології і медицини», 2024 Випуск 3, 174, 17-24 сторінки, код УДК 614.314-08-039.77:616.311.2:616.31:612.017.2

DOI:

10.29254/2077-4214-2024-3-174-17-24